ГОСТ 30519-97
--------------------------
ГОСТ Р 50480-93

Группа Н09

     
МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

     
     
ПРОДУКТЫ ПИЩЕВЫЕ

     
Метод выявления бактерий рода Salmonella

     
Food products. Method for detection of Salmonella

     
МКС 07.100.30
ОКСТУ 9109

Дата введения 1994-01-01

     
     
ИНФОРМАЦИОННЫЕ ДАННЫЕ

     
     1 РАЗРАБОТАН И ВНЕСЕН Всероссийским научно-исследовательским институтом консервной и овощесушильной промышленности (ВНИИКОП) и Техническим комитетом по стандартизации ТК 93 "Продукты переработки плодов и овощей"
     
     2 УТВЕРЖДЕН И ВВЕДЕН В ДЕЙСТВИЕ Постановлением Госстандарта России от 26.12.93 N 24
     
     Постановлением Госстандарта России от 16 апреля 1998 года N 122 ГОСТ 30519-97 введен в действие в качестве государственного стандарта Российской Федерации с момента принятия указанного постановления и признан имеющим одинаковую силу с ГОСТ Р 50480-93 на территории Российской Федерации в связи с полной аутентичностью их содержания
               
     3 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ
     
     4 ССЫЛОЧНЫЕ НОРМАТИВНО-ТЕХНИЧЕСКИЕ ДОКУМЕНТЫ     
     

     
          
     5 ПЕРЕИЗДАНИЕ
     
     
     Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты и устанавливает метод выявления в определенной навеске продукта бактерий рода Salmonella.
     
     

     1 Сущность метода

     
     Метод выявления бактерий рода Salmonella основан на высеве определенного количества продукта в жидкую неселективную среду, инкубировании посевов, последующем выявлении в этих посевах бактерий, способных развиваться в жидких селективных средах, образующих типичные колонии на агаризованных дифференциально-диагностических средах, имеющих типичные для бактерий рода Salmonella биохимические и серологические характеристики.
     
     

     2 Отбор и подготовка проб

     
     Отбор и подготовка проб - по ГОСТ 26668, ГОСТ 26669 или по нормативно-технической документации на анализируемый продукт.
     
     

     3 Аппаратура, материалы, реактивы

     
     Для проведения анализа применяют аппаратуру, материалы и реактивы по ГОСТ 10444.1, а также указанные ниже:
     
     весы лабораторные общего назначения с метрологическими характеристиками по ГОСТ 24104* с наибольшим пределом взвешивания 200 г, 2-го класса точности (для взвешивания реактивов);
_____________
     * С 1 июля 2002 г. введен в действие ГОСТ 24104-2001.
     
     весы лабораторные общего назначения с метрологическими характеристиками по ГОСТ 24104 с наибольшим пределом взвешивания 1 кг, 4-го класса точности (для взвешивания продукта);
     
     микроскоп световой биологический с увеличением 900-1000;
     
     петлю бактериологическую;
     
     стекла предметные по ГОСТ 9284;
     
     стекла покровные по ГОСТ 6672;
     
     термостат с диапазоном рабочих температур 28-55 °С, позволяющий поддерживать заданную температуру с допустимой погрешностью ±1 °С.
     
     спирт изобутиловый по ГОСТ 9536;
     
     бриллиантовый зеленый;
     
     желчь сухую или натуральную;
     
     контрольный штамп* бактерий рода Salmonella, не относящихся к тифозной группе;
________________
     * Текст соответствует оригиналу. - Примечание .
     
     магний хлористый по ГОСТ 4209;
     
     мочевину по ГОСТ 6691;
     
     сухие агглютинирующие адсорбированные поливалентные сальмонеллезные сыворотки основных групп А, В, С, Д, Е и редких групп;
     
     феноловый красный.
     
     

     4 Подготовка к анализу

     
     4.1 Приготовление растворов и реактивов
     
     4.1.1 Раствор бриллиантового зеленого концентрации 5 г/дм: 0,5 г бриллиантового зеленого переносят в фарфоровую ступку и постепенно растворяют в дистиллированной воде. Раствор переливают в мерную колбу вместимостью 100 см и доводят дистиллированной водой до метки. Раствор хранят в закрытом сосуде из темного стекла при комнатной температуре не более 3 мес.
     
     4.1.2 Раствор фенолового красного концентрации 4 г/дм: 0,4 г фенолового красного переносят в фарфоровую ступку и постепенно растворяют в дистиллированной воде. Раствор переливают в мерную колбу вместимостью 100 см и доводят дистиллированной водой до метки. Раствор хранят в закрытом сосуде из темного стекла при комнатной температуре не более 3 мес.
     
     4.1.3 Реактив Эрлиха: 1,0 г парадиметиламинобензальдегида растворяют в 95 см этилового спирта объемной концентрации 96% и прибавляют 80 см концентрированной соляной кислоты (=1,18-1,19 г/см).
     
     4.1.4 Реактив Ковача: перемешивают 5,0 г парадиметиламинобензальдегида, 25 см концентрированной соляной кислоты и 75 см изобутилового спирта.
     
     4.1.5 Спиртовой раствор -нафтола концентрации 50 г/дм: 5,0 г -нафтола помещают в колбу вместимостью 100 см, растворяют в этиловом спирте объемной концентрации 96% и доводят раствор этиловым спиртом до метки. Раствор готовят непосредственно перед применением.
     
     4.1.6 Спиртовой раствор фенолового красного концентрации 2 г/дм: 0,2 г фенолового красного переносят в колбу вместимостью 100 см, растворяют в этиловом спирте объемной концентрации 50% и доводят раствор этиловым спиртом до метки.
     
     4.1.7 Сухие агглютинирующие адсорбционные поливалентные сальмонеллезные сыворотки готовят перед употреблением по прописи, указанной в прилагаемом к ним наставлении.
     
     4.2 Приготовление питательных сред
     
     4.2.1 Забуференная пептонная вода: 10,0 г пептона, 5,0 г хлористого натрия, 9,0 г двузамещенного фосфорно-кислого натрия (NaHPO·12HO), 1,5 г однозамещенного фосфорно-кислого калия растворяют при нагревании в 1000 см дистиллированной воды, устанавливают рН так, чтобы после стерилизации он составлял при температуре 25 °С 7,0±0,1. Разливают по колбам в количестве, зависящем от навески анализируемого продукта (если навеска равна 25 г, то разливают по 225 см, то есть 1:9), и стерилизуют при температуре (121±1) °С в течение 20 мин.
     
     4.2.2 Магниевая среда: готовят путем соединения трех растворов.
     
     Приготовление раствора 1: 8,4 г пептона, 14,3 г хлористого натрия, 40 см дрожжевого экстракта, приготовленного по ГОСТ 10444.1, 2,85 г однозамещенного фосфорно-кислого калия растворяют при нагревании в 1780 см дистиллированной воды.
     
     Приготовление раствора 2: 71,4 г хлористого магния (MgCl·6НО) растворяют при нагревании в 180 см дистиллированной воды.
     
     Раствор 3: берут 1,8 см раствора бриллиантового зеленого, приготовленного по 4.1.1.
     
     Приготовленные растворы соединяют, устанавливают рН так, чтобы после стерилизации он составлял при температуре 25 °С 7,2±0,2, разливают в колбы или флаконы по 100 см и стерилизуют при температуре (112±1) °С в течение 30 мин.
     
     4.2.3 Селенитовая среда: готовят из двух растворов.
     
     Приготовление раствора 1: 5,0 г пептона, 7,0 безводного двузамещенного фосфорно-кислого натрия, 3,0 г безводного однозамещенного фосфорно-кислого натрия, 4,0 г лактозы растворяют при нагревании в 1000 см дистиллированной воды, охлаждают до 45-55 °С, если необходимо, путем изменения соотношения фосфатных солей устанавливают рН 7,0±0,1. Среду разливают по 100 см в колбы или флаконы и стерилизуют текучим паром по 30 мин в течение двух дней или при температуре (112±1) °С в течение 30 мин.
     
     Приготовление раствора 2: 10,0 г кислого селенисто-кислого натрия (NaHSeО) растворяют асептически в 100 см стерильной дистиллированной воды. Раствор готовят непосредственно перед употреблением.
     
     Приготовление среды: к 100 см раствора 1 прибавляют 4 см раствора 2.
     
     Стерилизация приготовленной среды не допускается, так как при этом происходит редукция кислого селенисто-кислого натрия, выпадает осадок красного цвета и среда становится непригодной.
     
     Селенитовая среда выпускается в сухом виде и готовится по прописи, указанной на этикетке.
     
     4.2.4 Тетратионатная среда (Мюллер-Кауфман)
     
     Приготовление основы среды: в 100 см мясо-пептонного бульона, приготовленного по ГОСТ 10444.1, помещают 4,5 г стерильного углекислого кальция. Углекислый кальций стерилизуют по ГОСТ 10444.1.
     
     Приготовленную основу стерилизуют при температуре (121±1) °С в течение 20 мин.
     
     При приготовлении среды к 100 см основы среды асептически прибавляют:
     
     10 см раствора гипосульфита натрия (NaSO·5НО);
     
     2 см йодного раствора;
     
     0,2 см раствора бриллиантового зеленого;
     
     5 см раствора желчи.
     
     Указанные растворы прибавляют к основе среды в приведенном выше порядке, перемешивая смесь после каждого прибавления.
     
     Среду допускается использовать в течение одной недели после приготовления.
     
     Указанные выше растворы, прибавляемые к основе среды, готовят следующим образом:
     
     раствор гипосульфита натрия: 50,0 г гипосульфита натрия помещают в колбу вместимостью 100 см, растворяют в дистиллированной воде и доводят дистиллированной водой до метки. Раствор переливают в колбу или флакон и стерилизуют текучим паром в течение 30 мин или при температуре (121±1) °С в течение 20 мин;
     
     йодный раствор: 25,0 йодистого калия помещают в колбу вместимостью 100 см, растворяют в небольшом количестве дистиллированной воды, прибавляют 20,0 г кристаллического йода, растворяют его. Объем раствора доводят дистиллированной водой до метки.
     
     Раствор хранят в плотно закрытом темном сосуде;
     
     раствор бриллиантового зеленого готовят по 4.1.1;
     
     раствор желчи: 10,0 г сухой желчи растворяют в 100 см дистиллированной воды или используют натуральную желчь. Раствор желчи или натуральную желчь стерилизуют при температуре (121±1) °С в течение 20 мин.
     
     4.2.5 Дифференциально-диагностические среды (сухие):
     
     висмут-сульфит агар (Вильсон-Блера);
     
     среду Плоскирева;
     
     среду Эндо;
     
     среду Левина.
     
     Среды готовят по прописи, указанной на этикетке.
     
     4.2.6 Трехсахарный агар: 10,0 г пептона, 3,0 г сухого дрожжевого экстракта или 15 см дрожжевого экстракта, приготовленного по ГОСТ 10444.1, 10,0 г лактозы, 10,0 г сахарозы, 1,0 г глюкозы, 0,3 г цитрата железа (или 0,2 г аммоний-железо сульфата (NН)Fe(SO)·6НО или 0,2 г сернокислого железа FeSO·6НО), 0,3 г гипосульфита натрия, 6 см раствора фенолового красного, приготовленного по п.4.1.2, 15,0 г агара растворяют при нагревании в 1000 см мясо-пептонного бульона, приготовленного по ГОСТ 10444.1, охлаждают до 45-55 °С и устанавливают рН так, чтобы после стерилизации он составлял при температуре 25 °С 7,2±0,2. Среду разливают в пробирки по 6-7 см и стерилизуют при температуре (121±1) °С в течение 10 мин.
     
     4.2.7 Агар Кристенсена с мочевиной: среда готовится путем соединения основы среды и раствора мочевины.
     
     Основа среды: 1,0 г пептона, 1,0 г глюкозы, 5,0 г хлористого натрия, 2,0 г безводного однозамещенного фосфорнокислого калия, 3 см раствора фенолового красного, приготовленного по 4.1.2, 15,0 агара растворяют при нагревании в 1000 см дистиллированной воды, охлаждают до 45-55 °С и устанавливают рН так, чтобы после стерилизации он составлял при температуре 25 °С 6,7±0,1.
     
     Основу среды мерно разливают в колбы или флаконы и стерилизуют при температуре (121±1)°С в течение 20 мин.
     
     Раствор мочевины концентрации 400 г/дм: 40,0 г мочевины помещают в колбу вместимостью 100 см, растворяют в дистиллированной воде, объем раствора доводят дистиллированной водой до метки.
     
     Раствор мочевины стерилизуют фильтрацией по ГОСТ 26670 или текучим паром в течение 30 мин.
     
     При приготовлении среды к 950 см основы прибавляют асептически 50 см раствора мочевины, разливают в стерильные пробирки по 6-7 см.
     
     4.2.8 После стерилизации среды, приготовленные по 4.2.6 и 4.2.7, скашивают так, чтобы оставался столбик высотой 2-2,5 см.
     
     4.2.9 Полужидкий мясо-пептонный агар: готовят по ГОСТ 10444.1 так же, как мясо-пептонный агар, но при приготовлении добавляют 4,0-8,0 г агара на 1000 см мясо-пептонного бульона, перед стерилизацией среду разливают по 6-7 см в пробирки.
     
     4.2.10 Мясо-пептонный бульон с глюкозой: готовят по ГОСТ 10444.1. Для посевов используют среду, разлитую в пробирки по 6-7 см.
     
     4.2.11 Бульон Хоттингера: готовят по ГОСТ 10444.1. Для посевов используют среду, разлитую в пробирки по 6-7 см.
     
     4.2.12 Мясо-пептонный бульон с 0,05% L-триптофана: 0,05 L-триптофана растворяют в 100 сммясо-пептонного бульона, приготовленного по ГОСТ 10444.1, разливают в пробирки по 6-7 см и стерилизуют при температуре (121±1) °С в течение 20 мин.
     
     4.2.13 Среды с углеводами (среды Гисса): готовят по ГОСТ 10444.1 или используют сухие среды с углеводами, которые готовят по прописи, указанной на этикетке.
     
     4.2.14 Мясо-пептонный агар: готовят по ГОСТ 10444.1 или используют среду, приготовленную из сухого питательного агара.
     
     Среду из сухого питательного агара готовят по прописи, указанной на этикетке.
     
     

     5 Проведение анализа

     
     5.1 Неселективное предварительное обогащение
     
     Навеску продукта, в массе (объеме) которой нормативно-технической документацией на анализируемый продукт предусматривается отсутствие бактерий рода Salmonella, высевают в забуференную пептонную воду, приготовленную по 4.2.1. Соотношение массы (объема) продукта и забуференной пептонной воды 1:9.
     
     При посеве жидких высококислотных продуктов для предотвращения снижения рН питательных сред на 0,5 и более рН продукта перед посевом доводят до 7,0±0,2.
     
     При посеве твердых высококислотных продуктов доводят рН до 7,0±0,2 в посевах.
     
     Доведение рН проводят асептически с помощью стерильных растворов гидроокиси натрия и соляной кислоты, приготовленных по ГОСТ 10444.1. Количество добавляемого раствора гидроокиси натрия устанавливают опытным путем.
     
     Посевы инкубируют при температуре (36±1) °С в течение 18-20 ч.
     
     5.2 Селективное обогащение
     
     Культуры, полученные после инкубирования по 5.1, пересевают в две среды для селективного обогащения. Для этого по 10 см культуры переносят в 100 см магниевой среды, приготовленной по 4.2.2, и в 100 см тетратионатной среды, приготовленной по 4.2.4, или по 10 см культуры переносят в 100 см селенитовой среды, приготовленной по 4.2.3, и в 100 см тетратионатной среды.
     
     Посевы инкубируют в течение 24-48 ч на магниевой и селенитовой средах при температуре (36±1) °С, а на тетратионатной среде при температуре (43±1) °С.
     
     5.3 Выделение и идентификация культур на агаризованных дифференциально-диагностических средах
     
     Культуры через 24 и 48 ч инкубирования по 5.2 пересевают (по ГОСТ 26670) на три агаризованные среды, приготовленные по 4.2.5: висмут-сульфит агар, среду Плоскирева и среду Эндо (или среду Левина).
     
     Допускается использование одной чашки каждой из сред одновременного высева с двух селективных сред.
     
     Посевы инкубируют при температуре (36±1) °С в течение 24-48 ч.
     
     После 24 ч инкубирования посевов проводят предварительный учет результатов, а после 48 ч - окончательный.
     
     После инкубирования посевов отмечают на дифференциально-диагностических средах рост колоний, характерных для бактерий рода Salmonella:
     

     на висмут-сульфит агаре колонии черные с характерным металлическим блеском, а также зеленоватые с темно-зеленым ободком и с пигментированием среды под колониями;
     
     на среде Плоскирева колонии бесцветные прозрачные, но более плотные, чем на среде Эндо;
     
     на среде Эндо колонии круглые бесцветные или слегка розоватые, прозрачные;
     
     на среде Левина колонии прозрачные, слабо-розовые или розовато-фиолетовые.
     
     При отсутствии в посевах на дифференциально-диагностических средах характерных для бактерий рода Salmonella колоний дают заключение об отсутствии бактерий рода Salmonella в анализируемой навеске продукта.
     
     При наличии хотя бы на одной дифференциально-диагностической среде характерных для бактерий рода Salmonella колоний проводят их дальнейшее изучение.
     
     5.4 Биохимическое подтверждение принадлежности выделенных характерных колоний к бактериям рода Salmonella
     
     5.4.1 Не менее трех характерных колоний с каждой дифференциально-диагностической среды (см. 5.3) пересевают на скошенную поверхность мясо-пептонного агара или среды из сухого питательного агара, приготовленных по 4.2.14, и часть колоний пересевают штрихом по поверхности и уколом в столбик трехсахарного агара, приготовленного по 4.2.6.
     
     Посевы инкубируют при температуре (36±1) °С в течение 24 ч.
     
     5.4.2 Из отобранных по п.5.4.1 для биохимического подтверждения колоний приготовляют мазки и окрашивают по Граму.
     
     Бактерии рода Salmonella являются грамоотрицательными палочками с закругленными концами.
     
     5.4.3 После инкубирования посевов, как указано в 5.4.1, проводят учет результатов ферментации лактозы, глюкозы и сахарозы на трехсахарном агаре:
     
     пожелтение скошенной части среды указывает на ферментацию лактозы или сахарозы или обоих сахаров;
     
     пожелтение столбика среды с разрывом агара или пузырьками газа указывает на ферментацию глюкозы с образованием газа, пожелтение столбика среды без разрывов или пузырьков газа указывает на ферментацию глюкозы без образования газа;
     
     почернение среды в столбике указывает на образование сероводорода.
     

     Типичными для бактерий рода Salmonella являются культуры, ферментирующие глюкозу с образованием или без образования газа, не ферментирующие лактозу и сахарозу, образующие сероводород.
     
     Дальнейшему изучению подвергают также лактозоположительные бактерии или бактерии, не образующие сероводород, но обязательно ферментирующие глюкозу с образованием или без образования газа.
     
     5.4.4 У культур, отобранных согласно 5.4.3 и пересеянных предварительно, как указано в 5.4.1, на поверхность мясо-пептонного агара или среды, приготовленной из сухого питательного агара, изучают возможность расщепления мочевины, образования ацетоина и индола, ферментации сахарозы и маннита и подвижность.
     
     5.4.5 Определение расщепления мочевины
     
     Культуры пересевают штрихом на поверхность агара Кристенсена с мочевиной, приготовленного по 4.2.7.
     
     Посевы инкубируют при температуре (36±1) °С в течение 24 ч.
     
     При положительной реакции - расщеплении мочевины цвет среды от розового до светло-вишневого. Для уреазоположительных бактерий реакция часто становится видимой после 2 ч инкубирования.
     
     Бактерии рода Salmonella не расщепляют мочевину.
     
     5.4.6 Определение образования ацетоина (реакция Фогес-Проскауера)
     
     Культуры пересевают в мясо-пептонный бульон с глюкозой, приготовленный по 4.2.10.
     
     Посевы инкубируют при температуре (36±1) °С в течение 48 ч.
     
     После инкубирования к 1 см отобранной культуральной жидкости прибавляют 0,6 см раствора -нафтола, приготовленного по 4.1.5, и 0,2 см раствора гидроокиси калия концентрации 400 г/дм. После прибавления каждого реактива пробирку встряхивают. Появление розового окрашивания через 15 мин указывает на положительную реакцию.
     
     Бактерии рода Salmonella не образуют ацетоина (реакция Фогес-Проскауера отрицательная).
     
     5.4.7 Определение образования индола
     
     Культуры пересевают в бульон Хоттингера, приготовленный по 4.2.11, или в мясо-пептонный бульон с L-триптофаном, приготовленный по 4.2.12.
     
     Посевы инкубируют при температуре (36±1) °С в течение 24 ч.
     
     После инкубирования к посевам прибавляют по 1 см реактива Эрлиха или Ковача, приготовленных соответственно по 4.1.3 и 4.1.4.
     
     Образование красного слоя указывает на положительную реакцию.
     
     Бактерии рода Salmonella не образуют индол.
     
     5.4.8 Определение ферментации маннита и сахарозы
     
     Культуры пересевают в среды Гисса с маннитом или сахарозой, приготовленные по 4.2.13.
     
     Посевы инкубируют при температуре (36±1) °С в течение 24 ч.
     
     Бактерии рода Salmonella не сбраживают сахарозу, не сбраживают маннит. При сбраживании маннита цвет среды изменяется, образуется или не образуется газ.
     
     5.4.9 Определение подвижности
     
     Культуры пересевают уколом в полужидкий мясо-пептонный агар.
     
     Посевы инкубируют при температуре (36±1) °С в течение 24 ч.
     
     При росте подвижных культур отмечается диффузный рост по всему столбику агара, при росте неподвижных культур - вдоль места укола.
     
     Большинство штаммов бактерий рода Salmonella подвижны.
     
     5.5 Результаты биохимического подтверждения культур оценивают, пользуясь таблицей приложения.
     
     5.6 Серологическое подтверждение принадлежности культур к бактериям рода Salmonella
     
     Серологическое подтверждение принадлежности к бактериям рода Salmonella проводят с культурами, давшими типичные биохимические реакции согласно приложению, и предварительно пересеянными, как указано в 5.4.1, на поверхность мясо-пептонного агара или среды, приготовленной из сухого питательного агара.
     
     5.6.1 Определение самоагглютинирующих штаммов
     
     Помещают каплю физиологического раствора, приготовленного по ГОСТ 10444.1, на тщательно очищенное предметное стекло. Диспергируют в этой капле часть тестируемой колонии так, чтобы получилась гомогенная и густая суспензия.
     
     Покачивают осторожно стекло в течение 30-60 с. Отмечают результаты на темном фоне, лучше с помощью увеличительного стекла. Если наблюдается в разной степени склеивание бактерий, то есть образование осадка, то считают, что тестируемые штаммы обладают самоагглютинацией.
     
     Штаммы бактерий, обладающие самоагглютинацией, не подвергают дальнейшей серологической идентификации.
     
     5.6.2 Определение наличия 0-антигенов
     
     Штаммы, у которых не выявлено самоагглютинации, испытывают в реакции агглютинации с агглютинирующими адсорбированными поливалентными сальмонеллезными сыворотками основных групп А, В, С, D, Е, а затем, если не выявлено 0-антигенов с сыворотками основных групп, ставят реакцию с сыворотками редких групп.
     
     Подготовка сывороток к постановке реакции агглютинации и методика ее проведения указаны в наставлении, прилагаемом к сывороткам.
     
     Агглютинация (наличие 0-антигенов) проявляется в виде склеивания бактериальной массы и полного или частичного просветления жидкости.
     
     При отрицательной реакции агглютинации культура после тщательного смешивания с каплей сыворотки образует гомогенную смесь.
     
     5.7 При определении биохимических и серологических характеристик выделенных культур в качестве контроля используют типичный по этим показателям штамм бактерий рода Salmonella, указанный в разд.3.
     
     

     6 Оценка результатов

     
     6.1 Результаты оценивают по каждой пробе отдельно.
     
     6.2 Интерпретация биохимических и серологических испытаний
     
     Культуры, показавшие типичные биохимические и серологические реакции, относят к бактериям рода Salmonella.
     
     Предположительно к бактериям рода Salmonella относят:
     
     культуры, у которых не обнаружено самоагглютинации и 0-антигенов, но показавшие типичные биохимические реакции;
     
     культуры, у которых обнаружена самоагглютинация и типичные биохимические реакции.
     
     Культуры, у которых не обнаружено самоагглютинации, не давшие типичных биохимических и серологических реакций, не относят к бактериям рода Salmonella.
     
     6.3 Результаты выявления бактерий рода Salmonella в определенной навеске продукта записывают: "бактерии рода Salmonella обнаружены в  г (см) продукта" или "бактерии рода Salmonella не обнаружены в  г (см) продукта".
     
      - масса (объем) навески продукта, в которой выявляли бактерии рода Salmonella.
     
     

ПРИЛОЖЕНИЕ
(обязательное)

     
Биохимическая характеристика четырех подродов Salmonella
и атипичных видов, входящих в подрод Salmonella I

     
     
     
Текст документа сверен по:
официальное издание

Молоко и молочные продукты.
Общие методы анализа: Сб. ГОСТов. -
М.: ИПК Издательство стандартов, 2004