МУК 4.2.1783-03

    
    
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

    
    
4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

    
Метод микробиологического измерения концентрации клеток микроорганизма
Penicillium canescens F-832 - продуцента ксиланазы в воздухе рабочей зоны

    
    
Дата введения 2003-12-01

    
    
    1. РАЗРАБОТАНЫ: Российским государственным медицинским университетом (к.б.н. Н.И.Шеиной).
    
    2. УТВЕРЖДЕНЫ Первым заместителем министра здравоохранения Российской Федерации - Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г.Онищенко 24 октября 2003 г.
    
    3. ВВЕДЕНЫ В ДЕЙСТВИЕ с 1 декабря 2003 г.
    
    4. ВВЕДЕНЫ ВПЕРВЫЕ.
    
    

1. Общие положения и область применения

    
    Настоящие методические указания устанавливают методику проведения микробиологического количественного анализа концентрации клеток штамма Penicillium canescens F-832 - продуцента ксиланазы в воздухе рабочей зоны в диапазоне концентраций от 100 до 3000 клеток в 1 м воздуха.
    
    Методические указания разработаны в соответствии с требованиями ГОСТ 12.1.005-88 "ССБТ. Воздух рабочей зоны. Общие санитарно-гигиенические требования" и ГОСТ Р 8.563-96 "Методики выполнения измерений".
    
    Методические указания предназначены для применения в лабораториях предприятий, организаций и учреждений, аккредитованных в установленном порядке на право проведения микробиологических исследований.
    
    

2. Характеристика штамма-продуцента ксиланазы

    
    Микроорганизм Penicillium canescens F-832 является продуцентом фермента ксиланазы. Штамм растет на различных агаризованных и жидких средах. Культура образует цепочки спор, обычно прямые или слегка извилистые, с гладкой оболочкой. На твердом сусло-агаре на 3 сутки роста при температуре 30 °С образует округлые радиально-складчатые морщинистые колонии с кремовым или сероватым налетом, диаметром 2-3 мм. На 4-5 сутки инкубации размеры колонии достигают 5-7 мм, конфигурация и складчатость колоний не изменяется, образуется воздушный мицелий со спорами бежевато-ceporo цвета, подошва колоний оранжево-коричневая.
    
    Штамм устойчив практически ко всем широко известным антибиотикам.
    
    ПДК штамма в воздухе рабочей зоны 2000 кл/м, А.
    
    

3. Пределы измерений

    
    Методика обеспечивает выполнение измерений количества клеток продуцента ксиланазы в воздухе рабочей зоны в диапазоне концентраций от 100 до 3000 клеток в 1 м воздуха при доверительной вероятности 0,95.
    
    

4. Метод измерений

    
    Прямой метод основан на аспирации из воздуха клеток продуцента ксиланазы на поверхность плотной питательной среды (сусло-агар) и подсчета выросших колоний по типичным морфологическим признакам.
    
    Косвенный метод измерения концентрации штамма-продуцента основан на аспирации из воздуха микробных клеток на поверхность плотной питательной селективной среды и подсчета выросших колоний по зонам просветления, образующихся вокруг каждой колонии штамма как результат продукции ксиланазы на среде с окрашенной целлюлозой.
    
    

5. Средства измерений, вспомогательные устройства, реактивы и материалы

    
    При выполнении измерений применяют следующие средства измерений, вспомогательные устройства и материалы.
    

5.1. Средства измерений, вспомогательные устройства, материалы

    
5.2. Реактивы, растворы

6. Требования безопасности

    
    При выполнении измерений концентрации клеток продуцента ксиланазы в воздухе рабочей зоны соблюдают следующие требования.
    
    6.1. Правила техники безопасности при работе с химическими реактивами по ГОСТ 12.1.005-88.
    
    6.2. Электробезопасность при работе с электроустановками по ГОСТ 12.1.019-79 и инструкции по эксплуатации прибора.
    
    6.3. "Инструкции по устройству, требованиям безопасности и личной гигиены при работе в микробиологических лабораториях предприятий микробиологической промышленности" (1977).
    
    6.4. Все виды работ с реактивами проводят только в вытяжном шкафу при работающей вентиляции, работа с биологическим материалом осуществляется в боксе, оборудованном бактерицидными лампами.
    
    

7. Требования к квалификации операторов

    
    К выполнению измерений и обработке их результатов допускают лиц с высшим или средним специальным образованием, прошедших соответствующую подготовку и имеющих навыки работы в области микробиологических исследований.
    
    

8. Условия измерений

    
    Процессы приготовления растворов и подготовки проб к анализу проводят в нормальных условиях при температуре воздуха (20±5 °С), атмосферном давлении 630-800 мм рт.ст. и влажности воздуха не более 80%.
    
    

9. Проведение измерения

    
9.1. Условия отбора проб воздуха

    
    Для определения продуцента ксиланазы воздух аспирируют при помощи аппарата Кротова со скоростью 10 л/мин на поверхность плотной питательной среды. Время аспирации воздуха (1-10 мин) зависит от предполагаемой концентрации клеток продуцента.
    
    Аппарат Кротова перед каждым отбором пробы воздуха тщательно протирают спиртом. Особенно тщательно обрабатывают поверхность подвижного диска и внутреннюю стенку прибора; наружную и внутреннюю стенку крышки. На подвижной диск устанавливают подготовленную чашку Петри со средой, одновременно снимая с нее крышку. Прибор закрывают. Соприкосновение крышки прибора со средой недопустимо. После отбора пробы воздуха и остановки диска, прибор открывают, быстро снимают чашку Петри и закрывают крышкой от данной чашки. На дне чашки Петри стеклографом отмечают точку контроля, время аспирации и дату отбора пробы.
    

9.2. Выполнение анализа

    
    Прямой метод предполагает учет количества типичных по морфологическим признакам колоний выросших на 3-5 сутки после посева воздуха и позволяет учитывать на чашке до 200 колоний продуцента.
    
    Сусло-агар расплавляют, остужают до 60 °С, добавляют свежеприготовленный в стерильной дистиллированной воде раствор одного из антибиотиков из расчета 50 мкл на 1 мл среды (пенициллин, стрептомицин, цефалотин или другой), для подавления посторонней бактериальной микрофлоры) и нистатина или амфотерицина 15 мкг/мл для подавления грибковой флоры. Чашки с застывшей средой помещают в термостат на сутки при температуре 37 °С, после чего проросшие чашки бракуют, стерильные чашки используют для контроля воздуха.
    
    При выполнении анализа воздуха рабочей зоны косвенным методом селективную среду расплавляют, остужают до 60 °С, добавляют 50 мг/л бенгальского розового, растворенного в 1 мл диметилсульфоксида, тщательно перемешивают и разливают по 10 мл в стеклянные чашки Петри на горизонтальной поверхности. Бенгальский розовый предназначен для специфического окрашивания целлюлозы и для ограничения разрастания колоний на чашках.
    
    После отбора проб воздуха чашки Петри помещают в термостат на 30 °С. На 3-5 сутки производят подсчет выросших типичных колоний продуцента по культурально-морфологическим признакам или по зонам просветления вокруг колоний как результат действия ксиланазы на окрашенную целлюлозу. При необходимости культуру подвергают микроскопированию.
    
    

10. Вычисление результатов измерения

    
    Расчет концентрации клеток продуцента в пересчете на 1 м воздуха производят по формуле:
    

, кл./м,

    
где -  концентрация клеток продуцента в воздухе;
    
     - количество колоний продуцента, выросших на чашке;
    
    1000 - коэффициент пересчета на 1 м воздуха;
    
     - объем воздуха, л (произведение скорости на время аспирации).
    
    В случае невозможности использования аппарата Кротова, рекомендуется применять метод седиментации клеток продуцента из воздуха непосредственно на чашки Петри с плотной питательной средой. Время отбора проб воздуха может составлять до 30 мин. При использовании этого метода пользуются следующим расчетом концентрации клеток продуцента:
    
    эмпирически установлено, что за 5 мин на площадь 100 см оседает количество бактерий, содержащееся в 10 л воздуха, за 1 мин - 2 л воздуха. Площадь чашки Петри диаметром 100 мм равна 78,54 см.
    
    Составляем пропорцию:
    
    на 100 см за 1 мин оседает 2 л воздуха  
    
    на 78,54 см-                      л
    
    =1,57 л/мин

    
    Следовательно, на стеклянную чашку Петри за 1 мин оседает 1,57 л воздуха.
    
    Надо определить количество клеток в 1 м воздуха.
    
    На 1 чашку (диаметр 100 мм) за 1 мин оседает количество микробов, содержащихся в 1,57 л воздуха, за мин - 1,57 л.
    
    В этом количестве содержится колониеобразующих единиц (микробных клеток - спор, обрывков мицелия), а в 1 м воздуха содержится     

    
    Пример: за 30 мин седиментации выросло 12 колоний микроорганизма. В 1 м воздуха содержится
    

клетки

11. Оформление результатов измерений

    
    Результаты измерений оформляют протоколом по форме.

Протокол N
количественного микробиологического анализа штамма Рenicillium canescens F-832 -
продуцента ксиланазы в воздухе рабочей зоны

    
Результаты микробиологического анализа

    
    
    Ответственный исполнитель
    
    Научный руководитель
    
    

Список литературы

    
    1. ГОСТ 12.1.005-88 "ССБТ. Воздух рабочей зоны. Общие санитарно-гигиенические требования".
    
    2. ГОСТ 8.563-96*. ГСИ "Методики выполнения измерений".
______________
    * Вероятно ошибка оригинала. Следует читать ГОСТ Р 8.563-96. ГСИ "Методики выполнения измерений". - Примечание .
    
    3. Положение об организации работы по технике безопасности в микробиологической промышленности. - М., 1980. 27 с.
    
    4. Инструкции по устройству, требованиям безопасности и личной гигиены при работе в микробиологических лабораториях предприятий микробиологической промышленности. - М., 1977. 7 с.



Текст документа сверен по:
официальное издание

Методические указания. -
М.: Федеральный центр госсанэпиднадзора

Минздрава России, 2004