ГЛАВНЫЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ САНИТАРНЫЙ ВРАЧ
РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

ПОСТАНОВЛЕНИЕ

от 30 ноября 2007 года N 80

О надзоре за оборотом пищевых продуктов, содержащих ГМО

     
     
     Я, Главный государственный санитарный врач Российской Федерации Г.Г.Онищенко, проанализировав материалы государственного надзора за выполнением обязательных требований при обороте пищевых продуктов, содержащих компоненты, полученные с применением генно-инженерно-модифицированных организмов (далее - ГМО), отмечаю.
     
     В Российской Федерации с 1996 года разработана и функционирует законодательная, нормативная и методическая база, позволяющая осуществлять оценку безопасности, и организован мониторинг за оборотом пищевой продукции, полученной из ГМО. Действующая система в значительной степени гармонизирована с требованиями Международных организаций и Европейского союза.
     
     За период с 1996 по 2007 год в мире площади посевов генетически модифицированных культур возросли в 60 раз, достигнув более 110 млн.га. В настоящее время разрешено к применению в разных странах более 120 видов трансгенных растений, в том числе 86 - в Европе.
     
     В Российской Федерации за эти годы прошли полный цикл исследований 17 видов генетически модифицированных культур. На 30.11.2007 на территории Российской Федерации действуют санитарно-эпидемиологические заключения и свидетельства о государственной регистрации на 12 видов пищевой продукции растительного происхождения, полученных с применением трансгенных технологий: 6 сортов кукурузы, 4 сорта картофеля, 1 сорт риса и 1 сорт сахарной свеклы.
     
     В мире существуют разные подходы к этикетированию пищевых продуктов, полученных из ГМО. В США, Канаде, Аргентине данные продукты не этикетируются, в странах ЕЭС принят 0,9% пороговый уровень, в странах Японии, Австралии - 5%. При этом введение порогового уровня содержания ГМО, при котором необходимо этикетировать пищевые продукты, не связано с вопросом их безопасности, а преследует цели информирования населения об использовании технологии получения пищевых продуктов.
     
     С 12 декабря 2007 года вступает в силу Закон Российской Федерации от 07.02.92 N 2300-1 "О защите прав потребителей" (Собрание законодательства Российской Федерации, 1996, N 3, ст.140) был гармонизирован с требованиями Европейского союза по этикетированию пищевых продуктов, полученных из ГМО, установленными Директивой Европейского парламента и Совета от 22.09.2003 N 1829/2003 о генетически модифицированной пище и кормах, которая с апреля 2004 года ввела в странах Европейского Союза 0,9% пороговый уровень для этикетирования пищевых продуктов, полученных из ГМО.
     

     Ранее аналогичный показатель был закреплен санитарно-эпидемиологическими правилами СанПиН 2.3.2.2227-07 "Дополнения и изменения N 5 к санитарно-эпидемиологическим правилам СанПиН 2.3.2.1078-01 "Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов" (зарегистрированы в Минюсте России 16.06.2007, регистрационный номер 9852), установившими с 01.09.2007, что содержание в пищевых продуктах 0,9% и менее компонентов, полученных с применением ГМО, является случайной или технически неустранимой примесью и пищевые продукты, содержащие указанное количество таких компонентов, не относятся к категории пищевых продуктов, содержащих компоненты, полученные с применением ГМО.
     
     Система оценки безопасности пищевых продуктов, полученных из ГМО, включает проведение пострегистрационного мониторинга за ее оборотом, для осуществления которого разработаны методы идентификации ГМО в пищевых продуктах.
     
     В системе Роспотребнадзора в субъектах Российской Федерации имеется лабораторная база по исследованию пищевых продуктов на наличие ГМО. Постановлением Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 31.12.2004 N 13 "Об усилении надзора за пищевыми продуктами, полученными из ГМО" (по заключению Минюста России от 18.02.2005 N 01/1203-ВЯ данное постановление не нуждается в государственной регистрации) определены головные центры по количественному исследованию пищевых продуктов на наличие ГМО в каждом федеральном округе.
     
     За 9 месяцев 2007 года учреждениями Роспотребнадзора на наличие компонентов, полученных с применением ГМО, исследовано 29816 проб (2006 год - 37879, 2005 год - 18872, 2004 год - 12956, 2003 год - 4300) продовольственного сырья и пищевых продуктов. Из них компоненты ГМО содержали 652 пробы (2006 год - 1452, 2005 год - 1443, 2004 год - 1552, 2003 год - 511), что составило 2,2% (2006 год - 2,7%, 2005 год - 7,6%, 2004 год - 12%, 2003 год - 11,9%). Наиболее часто ГМО встречаются в мясных продуктах - 3,8% (2006 год - 6,6%, 2005 год - 15,8%, 2004 год - 20,5%, 2003 год - 14,8%), птицеводческих продуктах - 5,6% (2006 год - 3,8%, 2005 год - 9,1%, 2004 год - 15,43%, 2003 год - 29,5%), группе продуктов "прочие" (в основном растительные белки) - 3,3% (2006 год - 3,9%, 2005 год - 10,8%, 2004 год - 16,7%, 2003 год - 16,4%). В 2007 году увеличилась доля содержания компонентов ГМО в молочных продуктах (9 месяцев 2007 года - 5,1%, 2006 год - 1,3%).
     
     Учреждениями Роспотребнадзора при исследовании пищевых продуктов количественным методом определения ГМО, по предварительным данным, выявлено, что оборот пищевых продуктов, содержащих компоненты ГМО более 0,9%, составляет менее 1% от оборота всех пищевых продуктов, однако 90% из них не имеют обязательной информации о наличии ГМО.
     

     В связи с вышеизложенным с целью усиления Госсанэпиднадзора за пищевыми продуктами и в соответствии с Федеральным законом от 30.03.99 N 52-ФЗ "О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения" (Собрание законодательства Российской Федерации, 1999, N 14, ст.1650; 2002, N 1 (ч.1), ст.1; 2003, N 2, ст.167; N 27 (ч.1), ст.2700; 2004, N 35, ст.3607; 2005, N 19, ст.1752; 2006, N 1, ст.10; 2006, N 52 (ч.1), ст.5498; 2007, N 1 (ч.1), ст.21; 2007, N 1 (1 ч.), ст.29; 2007, N 27, ст.3213, 2007, N 46, ст.5554) и Федеральным законом от 01.01.2000* N 29-ФЗ "О качестве и безопасности пищевых продуктов" (Собрание законодательства Российской Федерации, 2000, N 2, ст.150; 2002, N 1 (ч.1), ст.2; 2003, N 2, ст.167, N 27 (ч.1), ст.2700; 2004, N 35, ст.3607; 2005, N 19, ст.1752, N 50, ст.5242; 2006, N 1, ст.10, N 14, ст.1458)
________________
     * Вероятно, ошибка оригинала. Следует читать "от 02.01.2000". - Примечание изготовителя базы данных.

     
постановляю:
     
     1. Организациям, осуществляющим ввоз, производство и оборот пищевых продуктов, принять меры по обязательному доведению до потребителя информации о наличии в продуктах питания компонентов, полученных с применением ГМО, в случае если их содержание составляет более 0,9%.
     
     2. Утвердить методические указания:
     
     2.1. МУ 2.3.2.2306-07 "Медико-биологическая оценка безопасности генно-инженерно-модифицированных организмов растительного происхождения" (приложение 1);

     
     2.2. МУК 4.2.2304-07 "Методы идентификации и количественного определения генно-инженерно-модифицированных организмов растительного происхождения" (приложение 2);     
     
     2.3. МУК 4.2.2305-07 "Определение генетически модифицированных микроорганизмов и микроорганизмов, имеющих генетически модифицированные аналоги, в пищевых продуктах методами полимеразной цепной реакции (ПЦР) в реальном времени и ПЦР с электрофоретической детекцией" (приложение 3).     
     
     3. Управлениям Роспотребнадзора по субъектам Российской Федерации и по железнодорожному транспорту:
     
     3.1. Считать осуществление надзора за пищевыми продуктами, полученными из ГМО, приоритетным направлением деятельности на 2008 год;
     
     3.2. Усилить государственный надзор за производством и оборотом пищевых продуктов, содержащих ГМО;
     
     3.3. Обеспечить выполнение необходимых лабораторных исследований по исследованию пищевых продуктов, содержащих ГМО;
     
     3.4. Осуществлять в средствах массовой информации и среди населения разъяснительную работу по вопросам безопасности пищевых продуктов, полученных из ГМО, и прав потребителей на получение полной и достоверной информации;
     
     3.5. Доложить о проделанной работе до 01.04.2008.
     
     4. Управлениям Роспотребнадзора по г.Москве, г.Санкт-Петербургу, Ростовской области, Нижегородской области, Свердловской области, Новосибирской области, Хабаровскому краю активизировать работу головных центров по количественному исследованию пищевых продуктов на наличие ГМО в федеральных округах.
     
     5. ФГУЗ Центры гигиены и эпидемиологии принять меры по дооснащению лабораторных подразделений аналитическим оборудованием по исследованию количественного состава ГМО.
     
     6. ФГУЗ "Федеральный центр гигиены и эпидемиологии" Роспотребнадзора до 01.03.2008 представить в Роспотребнадзор информацию о наличии в ФГУЗ "Центры гигиены и эпидемиологии" в субъектах Российской Федерации аналитического оборудования по качественному и количественному методам определения ГМО в пищевых продуктах и подготовке врачей-лаборантов.
     
     7. Просить научно-исследовательские учреждения РАМН, РАН, РАСХН совместно с научно-исследовательскими учреждениями Роспотребнадзора уделять приоритетное внимание совершенствованию методов оценки безопасности и контроля за пищевой продукцией, содержащей ГМО.
     
     8. Контроль за исполнением настоящего постановления возложить на заместителя Главного государственного санитарного врача Российской Федерации Л.П.Гульченко.
     
     

     Г.Онищенко

Зарегистрировано
в Министерстве юстиции
Российской Федерации
6 февраля 2008 года,
регистрационный N 11117

Приложение 1

УТВЕРЖДЕНО
постановлением
Главного государственного
санитарного врача
Российской Федерации
от 30 ноября 2007 года N 80

     
     
2.3.2. Пищевые продукты и пищевые добавки

Медико-биологическая оценка безопасности
генно-инженерно-модифицированных организмов
растительного происхождения

Методические указания
МУ 2.3.2.2306-07
 

I. Общие положения и область применения

     
     1.1. Методические указания устанавливают требования к проведению оценки безопасности генно-инженерно-модифицированных организмов растительного происхождения (ГМО).
     
     1.2. Требования, изложенные в настоящих Методических указаниях, применяются на этапе государственной регистрации ГМО, впервые поступающих на продовольственный рынок Российской Федерации.
     
     1.3. Методические указания разработаны с целью обеспечения единой, научно- обоснованной системы оценки безопасности ГМО, и учитывают новые методические подходы, как разработанные в России, так и рекомендованные международными организациями (ВОЗ, ФАО и др.).
     
     

II. Экспертный анализ и оценка данных, характеризующих
заявленные генно-инженерно-модифицированные организмы

     
     2.1. Общая характеристика ГМО включает анализ информации, представленной заявителем:
     
     - информации, позволяющей идентифицировать ГМО (вид, сорт, трансформационное событие);
     
     - информации об исходном родительском организме (таксономическая характеристика, описание способа размножения и распространения; данные о токсических, аллергенных и других неблагоприятных свойствах);
     
     - информации об организмах-донорах вносимых генов (таксономическая характеристика, история использования);
     
     - информации о методе генетической модификации (описание метода модификации, структуры вектора, структуры вставки);
     
     - информации о ГМО (описание свойств, приобретенных растением в результате модификации, описание структуры генетической конструкции (внесенной или удаленной) и места ее локализации, характеристику экспрессии встроенных генов (экспрессия в процессе онтогенеза растения, интенсивность экспрессии в структурных компонентах растения, и др.), характеристику различий с родительским организмом (способ размножения, способность к перекрестному опылению, устойчивость к стрессовым воздействиям и др.), характеристику генетической и фенотипической стабильности (должны быть представлены данные, полученные в результате исследований нескольких поколений ГМО), характеристику способности к переносу генов в другие организмы (растения, микроорганизмы).
     
     Оценка композиционной эквивалентности проводится на основании сведений, представленных заявителем, о результатах сравнения химического состава ГМО с химическим составом его традиционного аналога по следующим параметрам:
     
     - содержание белка;
     
     - аминокислотный состав;
     
     - содержание жира;
     
     - жирнокислотный состав;
     
     - углеводный состав;
     
     - содержание витаминов;
     
     - содержание макро- и микроэлементов;
     
     - содержание биологически активных веществ;
     
     - содержание аллергенов;
     
     - содержание антропогенных и природных контаминантов (токсичных элементов, микотоксинов, пестицидов, радионуклидов, вредных примесей и др.);
     
     - содержание антинутриентов и других веществ, характерных для растительных организмов данного вида.
     
     Перечень показателей варьируется в зависимости от свойств изучаемого растительного организма.
     
     2.3. Оценка композиционной эквивалентности ГМО и его традиционного аналога проводится с учетом биологических колебаний значений показателей, характерных для растений данного вида.
     
     2.4. Анализ результатов токсикологических исследований проводится на основании сведений, представленных заявителем, включающих:
     
     - результаты оценки безопасности одного или нескольких белков, определяющих проявление заданных признаков у ГМО (молекулярная и биохимическая характеристика белка; наличие или отсутствие гомологии с токсинами белковой природы, а также с белками, обладающими фармакологической, или иной биологической активностью (при использовании баз данных PIR, EMBL, SwissProt, GenBank, и др.); изучение стабильности белка при обработке, хранении, технологической переработке; влияние температуры и рН, возможные модификации и/или образование стабильных белковых фрагментов в результате различных воздействий; устойчивость белка к обработке протеолитическими ферментами в эксперименте in vitro; исследования острой пероральной токсичности белка в эксперименте на грызунах; и др.);
     
     - результаты оценки безопасности нативного продукта (данные 90-дневных исследований на грызунах, данные исследований на молодых быстро растущих животных (цыплятах-бройлерах, ягнятах и др.), - в случае если такие исследования проводились;
     
     - результаты других токсикологических исследований.
     
     2.5. Анализ результатов аллергологических исследований проводится на основании сведений, представленных заявителем, включающих:
     
     - результаты оценки аллергенных свойств одного или нескольких белков, определяющих проявление заданных признаков у ГМО (сравнение с известными аллергенами с использованием баз данных, содержащих информацию о трехмерной структуре и функции известных аллергенов и родственных им белков); определение потенциальной аллергенности белка в иммунохимических исследованиях in vitro с использованием IgE, выделенных из сыворотки крови пациентов, страдающих аллергией; определение устойчивости к воздействию протеолитических ферментов (пепсина); скрининговые исследования с использованием сывороток крови пациентов, страдающих аллергией; дополнительные исследования (в т.ч. in vivo);
     
     - результаты аллергологических исследований нативного продукта (сравнение набора аллергенов исследуемого ГМО с набором аллергенов его традиционного аналога и др.), - должны быть проведены в случае, если имеются данные об аллергенных свойствах организма-донора.
     
     2.6. Анализ результатов других исследований (в случае, если такие исследования были выполнены) проводится на основании сведений, представленных заявителем, включающих:
     
     - результаты определения пищевой ценности (так как заданные и незаданные эффекты генетической модификации могут являться причиной изменения баланса макро- и микронутриентов, и, следовательно, вести к изменению пищевой ценности продукта);
     
     - результаты применения новейших аналитических методов, таких как профильные технологии и др.
     
     2.7. Анализ результатов пострегистрационного мониторинга в стране-заявителе и других странах, осуществляемого с целью выявления незаданных эффектов генетической модификации, которые не могли быть обнаружены на стадии регистрационных исследований, проводится на основании сведений, представленных заявителем.
     
     

III. Методы обнаружения, идентификации и количественного
 определения генно-инженерно-модифицированных организмов
в пищевых продуктах

     
     3.1. Экспертная оценка методов идентификации ГМО направлена на подтверждение их адекватности инструментальной и методической базе, используемой в учреждениях Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека для контроля за обращением ГМО и маркировкой пищевых продуктов, содержащих ГМО.
     
     3.2. Экспертная оценка методов обнаружения, идентификации и количественного определения ГМО в пищевых продуктах проводится на основании сведений, представленных заявителем, включающих:
     
     - метод идентификации одного или нескольких трансформационных событий;
     
     - метод количественного определения одного или нескольких трансформационных событий;
     
     - протоколы проведения анализов;
     
     - описание праймеров;
     
     - стандартные образцы состава и свойств.
     
     

IV. Медико-генетическая оценка генно-инженерно-модифицированных
 организмов

     
     4.1. Медико-генетическая оценка ГМО включает проверку присутствия одной или нескольких синтетических генетических конструкций методом полимеразной цепной реакции (ПЦР).
     
     4.2. Медико-генетические исследования проводятся на основании сведений, представленных заявителем, включающих:
     
     - описание молекулярной структуры одной или нескольких синтетических генетических конструкций (нуклеотидная последовательность);
     
     - метод идентификации и количественного определения одного или нескольких трансформационных событий;
     
     - протокол проведения анализа;
     
     - описание праймеров;
     
     - стандартные образцы состава и свойств.
     
     

V. Оценка функционально-технологических свойств
 генно-инженерно-модифицированных организмов

     
     5.1. Перечень и объем исследований по разделу V определяются экспертными (учеными) советами соответствующих аккредитованных испытательных центров Российской Федерации на основании анализа представленных материалов.
     
     5.2. Изучаемые функциональные свойства:
     
     - рН водной суспензии;
     
     - растворимость;
     
     - реологические свойства водных дисперсий;
     
     - водоудерживающая и жироудерживающая способность;
     
     - критическая концентрация гелеобразования;
     
     - эмульсионная стабильность и др.
     
     

VI. Медико-биологическая оценка безопасности
генно-инженерно-модифицированных организмов

     
     6.1. Перечень и объем исследований по разделу VI определяются экспертными (учеными) советами соответствующих аккредитованных испытательных центров Российской Федерации на основании анализа представленных материалов.
     
     6.2. Гигиенические исследования ГМО включают определение показателей качества и безопасности:
     
     6.2.1. Перечень показателей безопасности определяется на основании требований СанПиН 2.3.2.1078-01 "Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов" для соответствующей группы продуктов.
     
     Изучаемые показатели:
     
     - содержание токсичных элементов;
     
     - содержание микотоксинов;
     
     - содержание пестицидов;
     
     - содержание радионуклидов;
     
     - содержание вредных примесей;
     
     - микробиологические показатели;
     
     - другие показатели (в случае необходимости).
     
     6.2.2. Перечень показателей качества определяется на основании свойств соответствующего растительного организма, а также анализа представленных заявителем материалов. В случае если заявителем представлены исчерпывающие данные по оценке композиционной эквивалентности ГМО (содержание белка, аминокислотный состав, содержание жира, жирнокислотный состав, углеводный состав, содержание витаминов, макро- и микроэлементов, специфических компонентов, биологически активных веществ, антинутриентов и других веществ, характерных для растений данного вида) исследования могут быть ограничены определением влажности, золы, содержания белка, жира, углеводов, пищевых волокон.
     
     6.2.3. В случае если генетическая модификация направлена на изменение химического состава ГМО, должны быть проведены исследования, подтверждающие заявленные изменения.
     
     6.3. Токсикологические исследования ГМО проводятся в эксперименте на лабораторных животных:
     
     6.3.1. Схема проведения эксперимента
     

     
     6.3.2. На протяжении эксперимента животные получают полусинтетический казеиновый рацион (ПКР). Исследуемый ГМО и его традиционный аналог включают в состав корма в максимально возможном количестве, не нарушающем баланс основных пищевых веществ. Замена ингредиентов рациона должна быть проведена с учетом содержания белков, жиров и углеводов во вводимом продукте при соблюдении принципа изокалорийности.
     
     Продуктовый набор и химический состав базового ПКР представлены в табл.1-2.
     
     

Таблица 1

     
СОСТАВ
базового полусинтетического казеинового рациона

_______________

     * состав солевой смеси представлен в табл.2
     
     ** 1 г содержит: тиамина (В1) - 0,4 мг, рибофлавина (В2) - 0,6 мг,
     
     пиридоксина (В6) - 0,4 мг, никотиновой кислоты - 3,0 мг,
     
     пантотената кальция - 1,5 мг, фолиевой кислоты - 0,2 мг,
     
     цианкобаламина (В12) - 0,003 мг, викасола - 0,1 мг, L-метионина - 50 мг,
     
     глюкозы - до 1 г.
     
     *** 0,1 мл содержит: ретинола ацетата 800 МЕ, эргокальциферола - 70 МЕ,
     
     -токоферола ацетата - 5 мг, подсолнечного масла - до 0,1 мл.
     
     

Таблица 2

     
СОСТАВ
 солевой смеси

     
     6.3.3. Исследуемые показатели:
     
     6.3.3.1. Интегральные показатели
     

     
     6.3.3.2. Гематологические показатели
     

     
     6.3.3.3. Биохимические показатели
     
     6.3.3.3.1. Общий биохимический анализ крови.
     
     Материал для исследований: сыворотка крови.
     

     
     6.3.3.3.2. Общий анализ мочи.
     
     Материал для исследований: моча.
     

     
     6.3.3.3.3. Системные биомаркеры
     
     6.3.3.3.3.1. Система антиоксидантной защиты.
     

     
     6.3.3.3.3.2. Система ферментов метаболизма ксенобиотиков.
     
     Материал для исследований: печень.
     

     
     6.3.3.3.3.3. Система регуляции апоптоза.
     
     1) стабильность мембран лизосом.
     
     Материал для исследований: печень.
     

     
     2) другие методы.
     
     6.3.3.4. Морфологические исследования
     

     
     6.4. Иммунологические исследования ГМО проводятся в эксперименте на мышах линий СВА и С57Bl/6 и включают изучение его иммуномодулирующих и сенсибилизирующих свойств по четырем тестам:
     
     действие на гуморальное звено иммунитета - в тесте определения уровня гемагглютининов к эритроцитам барана;
     
     действие на клеточное звено иммунитета - в реакции гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) к эритроцитам барана;
     
     действие как сенсибилизирующего агента - в тесте чувствительности к гистамину;
     
     действие на естественную резистентность мышей к Salmonella typhimurium (сальмонеллы мышиного тифа).
     
     В табл.3 представлены сравнительные характеристики мышей линий СВА и С57Bl/6.
     
     

Таблица 3

     
Характеристики мышей линий СВА и С57Bl/6

     
     6.4.1. Схема проведения эксперимента
     

_______________
     * Состав базового рациона приведен в п.6.3.2.
     
     
     Исследования начинают через 21 день с момента перевода мышей на экспериментальные рационы. В течение эксперимента ведутся наблюдения за поедаемостью корма и общим состоянием животных.
     
     6.4.2. Исследуемые показатели:
     
     1) действие ГМО на гуморальное звено иммунитета.
     
     Через 21 день эксперимента мышам контрольной (не менее 20 животных) и опытной (не менее 20 животных) групп обеих линий внутрибрюшинно вводят 0,5 мл эритроцитов барана (20 млн. клеток/мл). Забор крови для исследований проводится на 7-й, 14-й и 21-й день после введения эритроцитов барана. Сыворотку крови титруют в реакции гемагглютинации общепринятым методом. Полученные данные обрабатывают методами вариационной статистики с использованием t-критерия Стьюдента. Результаты приводятся в виде Мm, где М - выборочное среднее измеряемых величин, m - стандартная ошибка.
     
     2) действие ГМО на клеточное звено иммунитета.
     
     Через 21 день эксперимента мышам контрольной (не менее 15 животных) и опытной (не менее 15 животных) групп обеих линий подкожно в межлопаточную область вводят 0,5 мл эритроцитов барана (2 млн. клеток/мл). Через пять дней всем мышам в подушечку одной задней лапы вводят разрешающую дозу эритроцитов барана - 0,02 мл (1 млрд. клеток/мышь); в контрлатеральную лапу - 0,02 мл 0,95%-ного раствора хлорида натрия. Местную воспалительную реакцию оценивают через 18-20 часов путем определения массы опытной и контрольной лапок. Интенсивность местной реакции определяют по индексу реакции (ИР).
     
     3) действие ГМО как сенсибилизирующего агента к гистамину.
     
     Через 21 день эксперимента мышам контрольной (не менее 15 животных) и опытной (не менее 15 животных) групп обеих линий внутрибрюшинно вводят гистамин гидрохлорид (2,5 мг/мышь в 0,5 мл физиологического раствора). Реакцию учитывают через 24 часа по проценту гибели мышей.
     
     4) действие ГМО на естественную резистентность мышей к S. typhimurium изучают на модели внутрибрюшинного заражения мышей десятикратно отличающимися дозами S. typhimurium штамм 415. Через 21 день эксперимента мышей контрольной (не менее 30 животных) и опытной (не менее 30 животных) групп обеих линий заражают тремя дозами культуры: 1000, 100, 10 микробных клеток/мышь. После заражения за животными наблюдают в течение 21 дня. Вычисляют ЛД50, а также процент гибели животных по каждой дозе, затем проводят сравнительный анализ результатов.
     
     6.5. Аллергологические исследования ГМО проводятся в эксперименте на лабораторных животных: потенциальную аллергенность оценивают, определяя тяжесть протекания системной анафилаксии и уровня циркулирующих сенсибилизирующих антител (cубклассов IgG + IgG) у крыс, получающих в составе рациона исследуемый ГМО (группа "опыт") и его традиционный аналог (группа "контроль"). Метод основан на количественной сравнительной оценке тяжести реакции системной анафилаксии, возникающей при внутрибрюшинной (в/б) сенсибилизации взрослых крыс пищевым антигеном - овальбумином куриного яйца (ОВА) с последующим внутривенным (в/в) введением сенсибилизированным животным разрешающей дозы того же белка.
     
     6.5.1. Схема проведения эксперимента
     

     
Таблица 4

     
Стандартный рацион вивария

     
     6.5.2. Исследуемые показатели:
     
     На 1-й, 3-й, 5-й день опыта крыс в/б сенсибилизируют ОВА, а на 21-й день эксперимента вводят дополнительную ("бустерную") дозу антигена, уменьшенную в 10 раз в сравнении с первоначальной. Кормление рационами продолжают до утра 29-го дня эксперимента и затем вводят раствор ОВА в/в, после чего оценивают на протяжении 24 ч тяжесть развивающейся реакции анафилаксии по показателям числа летальных реакций, общего числа судорожных реакций и величины анафилактического индекса. Непосредственно перед введением разрешающей дозы у крыс отбирают 0,1-0,2 мл крови из хвостовой вены для определения уровня специфических антител.
     
     Иммуноферментное определение уровней циркулирующих специфических антител к ОВА проводят согласно. Статистическую обработку результатов проводят согласно U-критерию Фишера для долевых показателей, непараметрическим критериям хи-квадрат и Мана-Уитни с использованием пакетов программ Excel и SPSS 11.5.
     
     6.6. Генотоксикологические исследования ГМО проводятся в эксперименте на лабораторных животных. Оценка потенциальной генотоксичности ГМО включает выявление повреждений ДНК и выявление мутагенной активности в эксперименте in vivo. Метод выявления мутагенной активности основан на учете хромосомных аберраций в метафазных клетках пролиферирующих тканей. Регистрация повреждений ДНК предусматривает оценку целостности структуры ДНК методом щелочного гель-электрофореза изолированных клеток (метод ДНК-комет).
     
     6.6.1. Схема проведения эксперимента
     

_______________
     * Состав базового рациона приведен в п.6.3.2.
     
     
     6.6.2. Исследуемые показатели:
     
     1) в основе метода выявления мутагенной активности лежит регистрация видимых структурных нарушений хромосом в клетках костного мозга на стадии метафазы. Анализируют 100 метафаз от каждого животного. Учитывают число одиночных и парных фрагментов, хроматидных и хромосомных обменов, ахроматических пробелов (гепов) и разрывов по центромере, число клеток с множественными повреждениями и клеток с полной деструкцией хромосом. Оценку результатов цитогенетического анализа проводят путем сопоставления долей клеток с хромосомными аберрациями в контрольной и опытной группах.
     
     2) регистрация повреждений ДНК предусматривает оценку целостности структуры ДНК методом щелочного гель-электрофореза изолированных клеток (метод ДНК-комет). Метод основан на регистрации различной подвижности ДНК и возможных фрагментов ДНК лизированных клеток, заключенных в агарозный гель, в постоянном электрическом поле. При этом ДНК мигрирует к аноду, формируя электрофоретический след, напоминающий "хвост кометы", параметры которого зависят от степени поврежденности исследуемой ДНК. Общая схема метода включает получение гель-слайдов (подложки), получение микропрепаратов, лизис, щелочную денатурацию, электрофорез, нейтрализацию/фиксацию, окрашивание и микроскопический анализ.
     
     Микроскопический анализ проводят на эпифлуоресцентном микроскопе с соответствующими для конкретного красителя фильтрами при увеличении 200х-400х. На каждый микропрепарат анализируют не менее 100 "ДНК-комет". Анализ "ДНК-комет" может проводиться визуально или с помощью программно-аппаратного комплекса.
     
     6.7. Исследования репродуктивной токсичности ГМО проводятся в эксперименте на лабораторных животных и включают:
     
     1) изучение влияния на генеративную функцию;
     
     2) изучение эмбриотоксического и тератогенного действий, регистрируемых в пренатальном и постнатальном периодах развития.
     
     6.7.1. Схема проведения эксперимента

_______________
     * Состав базового рациона приведен в п.6.3.2.
     
     
     6.7.2. Исследуемые показатели:
     
     6.7.2.1. Интегральные показатели
     

     
     6.7.2.2. Показатели, характеризующие генеративную функцию
     

     
     6.7.2.3. Показатели, характеризующие пренатальное развитие потомства
     

     
     6.7.2.4. Показатели, характеризующие постнатальное развитие потомства
     

     
     6.7.3. Отчет по результатам исследований репродуктивной токсичности ГМО должен включать цифровые данные в форме таблиц, содержащих основные сведения, необходимые для суждения о наличии или отсутствии у исследуемого ГМО неблагоприятного действия на внутриутробное развитие и процессы репродукции.
     

Приложение 2

УТВЕРЖДЕНО
постановлением Главного
государственного
санитарного врача
Российской Федерации
от 30 ноября 2007 года N 80

     
     
Методы контроля и микробиологические факторы.
Пищевые продукты и пищевые добавки

Методы идентификации и количественного определения
 генно-инженерно-модифицированных организмов
 растительного происхождения

Методические указания
МУК 4.2.2304-07

     
     
I. Область применения

     
     1.1. Настоящие методические указания устанавливают методы идентификации и количественного определения генно-инженерно-модифицированных организмов (ГМО) растительного происхождения в пищевых продуктах.
     
     1.2. Представлены скрининговые методы, направленные на выявление и количественное определение рекомбинантной ДНК: промотора 35S из вируса мозаики цветной капусты, терминатора NOS из Agrobactetium tumefaciens и маркерных генов, позволяющие проводить предварительную проверку пищевой продукции.
     
     1.3. Представлены методы, направленные на идентификацию и количественное определение рекомбинантной ДНК, характерной для генетических конструкций и уникальных трансформационных событий, для осуществления окончательной идентификации линии ГМО растительного происхождения.
     
     

II. Аппаратура, инструменты, лабораторная посуда, реактивы

     
     2.1. Для проведения идентификации и количественного определения ГМО растительного происхождения используются следующая аппаратура и инструменты:
     
     - амплификаторы типа ABI Prism 7000, iCycler iQ, Rotor Gene-3000 (6000), АНК -32, "Терцик МС-2" и другие;
     
     - комплекс аппаратно-программный для анализа биологических микрочипов типа "ДЕРМИГЕН-001";
     
     - прибор для горизонтального электрофореза типа "Mini-Sub Cell GT System" с комплектом кювет и гребенок;
     
     - источник напряжения типа "Power Pac 300" с диапазоном регулируемого напряжения 50-300 В;
     
     - трансиллюминатор типа Т12 с защитным экраном, диапозон излучения 300-400 нм;
     
     - видеосистема типа "Gel Doc 2000", предназначенная для ввода в компьютер, анализа и документирования изображений люминисцирующих следов ДНК в гелях, окрашенных бромистым этидием, чувствительность - не менее 10 нг ДНК (по бромистому этидию);
     
     - холодильник бытовой электрический типа "Электролюкс", с температурой морозильной камеры минус 20°С;
     
     - микроцентрифуга настольная типа Эппендорф (частота вращения не менее 13000 мин);
     
     - термостат типа "TERMO 24-15" под пробирки типа Эппендорф вместимостью 0,5 и 1,5 мл, диапазон температур от 15°C до 120°C, количество гнезд - не менее 20 каждого типа, точность поддержания температуры - 0,2°C, разность температур между соседними ячейками - не более 0,5°C;
     
     - термостат суховоздушный типа ТВЗ-25 с рабочей температурой 42°C, рабочий диапазон от 20°C до 60°C, точность поддержания температуры 1°C;
     
     - аппарат для встряхивания типа "Вортекс", скорость вращения 250-3000 мин;
     
     - печь микроволновая (мощностью не менее 400 W);
     
     - весы лабораторные общего назначения 2-го класса точности с наибольшим пределом взвешивания 200 г;
     
     - анализатор потенциометрический типа МР 220, погрешность измерений рН ±0,01;
     
     - гомогенизатор перистальтического типа "Стомайкер" или других моделей;
     
     - облучатель бактерицидный настенный типа ОБН-150;
     
     - дозаторы с переменным объемом дозирования: 0,2-2,0 мкл с шагом 0,01 мкл, с точностью 1,2%; 0,5-10,0 мкл с шагом 0,01 мкл, с точностью 0,8%; 2-20 мкл с шагом 0,01 мкл, с точностью 0,8%; 20-200 мкл с шагом 0,1 мкл, с точностью 0,6%; 100-1000 мкл с шагом 1 мкл, с точностью 3%; 2-10 мл с шагом 0,1 мл, с точностью 0,5%.
     
     2.2. Для проведения идентификации и количественного определения ГМО растительного происхождения используется следующая лабораторная посуда:
     
     - цилиндры мерные лабораторные вместимостью 10, 25, 100, 1000 мл, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Z 327263-2 ЕА, Z 327301-2 ЕА, Z 327379-2 ЕА, Z 327476-2 ЕА;
     
     - колбы мерные лабораторные вместимостью 25, 50, 100, 250, 1000 мл, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Z 329517-1 ЕА, Z 329525-1 ЕА, Z 329533-1 ЕА, Z329541-1 ЕА, Z 329576-1 ЕА;
     
     - пробирки микроцентрифужные типа Эппендорф вместимостью 0,2, 0,5, 1,5 мл;
     
     - наконечники с фильтром для дозаторов с переменным объемом дозирования до: 10; 20; 200; 1000 мкл; 10 мл.
     
     2.3. Для проведения идентификации и количественного определения ГМО растительного происхождения используются следующие реактивы:
     
     - кислота соляная, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Н 1758;
     
     - кислота борная, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N В 7901;
     
     - натрий едкий, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N 221465;
     
     - натрий хлористый, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N S 3014;
     
     - этилендиаминтетрауксусная кислота (ЭДТА), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Е 5134;
     
     - гексадецилтриметиламмониум бромид (СТАВ), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Н 5882;
     
     - трис (оксиметил) аминометан, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Т 6791;
     
     - альбумин бычий сывороточный сухой (БСА), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N B 4287;
     
     - этидий бромистый, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Е 4391;
     
     - спирт этиловый, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат N 459836;
     
     - спирт изопропиловый, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N 19516;
     
     - хлороформ, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N 151823;
     
     - вода деионизированная, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N W 4502;
     
     - вода дистиллированная, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N W 3500;
     
     - 2-меркаптоэтанол, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N M 3148;
     
     - термостабильный фермент Taq-полимераза, оптимум работы в области 70С-72С, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Д 1806;
     
     - буфер для ПЦР с MgCl, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Р 2192;
     
     - агароза для электрофореза (тип П), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N A 6877;
     
     - маркер молекулярной массы ДНК, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Р 1473;
     
     - стандартный образец состава генетически немодифицированного организма растительного происхождения, корпорация "Сигма Алдрич" (Fluka), кат. N 53198;
     
     - стандартный образец состава ГМО растительного происхождения, корпорация "Сигма Алдрич" (Fluka), кат. N 44386;
     
     - 2'-дезоксиаденозин-5'трифосфорной кислоты тетранатриевая соль, тригидрат (АТФ), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Д 4788;
     
     - 2'-дезоксицитидин-5' трифосфорной кислоты тетранатриевая соль, тригидрат (ЦТФ), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Д 4913;
     
     - 2'-дезоксигуанозин-5'трифосфорной кислоты тетранатриевая соль, тригидрат (ГТФ), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N Д 5038;
     
     - 2'-дезокситимидин-5' трифосфорной кислоты тетранатриевая соль, тригидрат (ТТФ), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N T 9656;
     
     - праймеры, ЗАО "Синтол", (Россия);
     
     - натрия додецилсульфат (SDS), корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N L 4390;
     
     - 3%-ный раствор перекиси водорода, корпорация "Сигма Алдрич" (Sigma), кат. N 7722.
     
     2.4. Допускается использование другой аппаратуры, инструментов и реактивов с техническими характеристиками не хуже указанных выше отечественного и зарубежного производства, разрешенные для применения в установленном порядке.
     
     

III. Подготовка к анализу

     
     3.1. Приготовление растворов:
     
     - для приготовления 1М ТРИС - НСl (рН 7,5) в мерной колбе на 100 мл растворить 12,11 г Трис (оксиметил) аминометана в 80 мл дистиллированной воды, довести рН концентрированной соляной кислотой до 7,5, довести объем раствора до метки деионизованной водой, перемешать, хранить при температуре -20С° в течение не более года;
     
     - для приготовления 5М NaCl растворить 29,22 г натрия хлористого в 100 мл дистиллированной воды, перемешать, хранить в колбе с притертой пробкой при комнатной температуре до 1 года;
     
     - для приготовления 30%-ной NaОН растворить 3 г натрия гидроокиси в 7 мл дистиллированной воды;
     
     - для приготовления 0,5 М ЭДТА (рН 8,0) в мерной колбе на 100 мл растворить 18,62 г этилендиаминтетрауксусной кислоты в 80 мл дистиллированной воды, раствором 30%-ной натрия гидроокиси довести рН раствора до 8,0, дистиллированной водой объем раствора довести до метки, перемешать, хранить в колбе с притертой пробкой при комнатной температуре до 1 года.
     
     3.2. Приготовление хлороформа, насыщенного водой:
     
     - смешать 100 мл( )хлороформа с 20 мл деионизированной воды и оставить на 24 ч для насыщения;
     
     - срок хранения при температуре от 4°С до 5°С - не более 6 мес.
     
     3.3. Приготовление 70%-ного раствора этилового спирта:
     
     - смешать 70 мл( )96%-ного этилового спирта с 26 мл деионизированной воды;
     
     - срок хранения при температуре от 4°С до 5°С - не более 2 мес.
     
     3.4. Приготовление раствора БСА (20 мкг/ мл):
     
     - растворить 0,002 г сухого альбумина бычьего сывороточного в 1 мл деионизиованной воды, 10 мкл полученного раствора смешать с 990 мкл деионизированной воды;
     
     - срок хранения в морозильной камере при температуре минус 20°С - не более 6 мес.
     
     3.5. Приготовление лизирующего буфера (2%-ного "СТАВ"):
     
     - растворить 0,5 г гексадецилтриметиламмония бромида в 10 мл деионизированной воды, добавить 2,5 мл 1M Трис - HCl, 7 мл 5M NaCl, 1 мл 0,5 М ЭДТА, довести объем раствора деионизированной водой до 25 мл, перемешать;
     
     - срок хранения при температуре от 4°С до 5°С - не более 6 мес.
     
     3.6. Приготовление 1 х ТВЕ буфера для электрофореза:
     
     - в мерной колбе на 1000 мл растворить 10,8 г Трис (оксиметил) аминометана, 5,5 г борной кислоты и 0,92 г этилендиаминтетрауксусной кислоты, довести дистиллированной водой до метки, перемешать до полного растворения;
     
     - срок хранения 1 х раствора - 10 дней.
     
     3.7. Приготовление раствора бромистого этидия - CHNBr (10 мг/мл):
     
     - растворить 1 г бромистого этидия в 100 мл дистиллированной воды;
     
     - срок хранения в посуде темного стекла при температуре от 4°С до 5°С - 12 мес.
     
     3.8. Приготовление осаждающего буфера СТАВ:
     
     - в мерную колбу внести 1 г СТАВ, 0,5 г NaCl, добавить 100 мл деионизированной воды, довести раствором 30%-ной натрия гидроокиси рН раствора до 8,0, довести объем деионизированной водой до 200 мл;
     
     - хранить при 4°C не более 6 месяцев.
     
     3.9. Приготовление 1,2 М NaCl:
     
     - растворить 7,0 г NaCl в 100 мл деионизированной воды, перемешать;
     
     - хранить в колбе с притертой пробкой при комнатной температуре до 1 года.
     
     3.10. Приготовление 10%-ного раствора SDS:
     
     - растворить 10 г SDS в 90 мл дистиллированной воды;
     
     - хранить при комнатной температуре не более 1 года.
     
     

IV. Выделение ДНК

     
     4.1. Метод выделения ДНК с помощью СТАВ:
     
     - навеску исследуемого гомогенизированного продукта массой 100 мг поместить в микроцентрифужную пробирку типа Эппендорф на 1,5 мл;
     
     - добавить 300 мкл деионизированной воды, перемешать шпателем;
     
     - добавить 500 мкл лизирующего СТАВ-буфера с меркаптоэтанолом, тщательно перемешать шпателем;
     
     - инкубировать при 65°С 90 минут;
     
     - центрифугировать 10 минут при 13000 об/мин;
     
     - перести 500 мкл супернатанта в чистую пробирку типа Эппендорф вместимостью 1,5 мл;
     
     - добавить 500 мкл хлороформа, перемешать на вортекс 30 секунд;
     
     - центрифугировать 10 минут при 13000 об/мин;
     
     - перенести 500 мкл верхней фракции в чистую пробирку, добавить 500 мкл хлороформа, перемешать;
     
     - центрифугировать 5 минут при 13000 об/мин;
     
     - перенести верхнюю фракцию в чистую пробирку типа Эппендорф вместимостью 1,5 мл, не захватывая слой хлороформа;
     
     - добавить 2 объема СТАВ-осаждающего буфера, перемешать пипетированием;
     
     - инкубировать 60 минут при комнатной температуре;
     
     - центрифугировать 5 минут при 13000 об/мин;
     
     - удалить супернатант;
     
     - растворить осадок в 350 мкл NaCl (1,2 М);
     
     - добавить 350 мкл хлороформа, перемешать на вортекс 30 секунд;
     
     - центрифугировать 10 минут при 13000 об/мин;
     
     - перенести верхнюю фракцию в чистую пробирку типа Эппендорф вместимостью 1,5 мл;
     
     - добавить 0,6 объема изопропилового спирта, перемешать;
     
     - центрифугировать 10 минут при 13000 об/мин;
     
     - удалить супернатант;
     
     - добавить 500 мкл 70%-ного раствора этилового спирта и перемешать на вортекс;
     
     - центрифугировать 10 минут при 13000 об/мин;
     
     - удалить супернатант;
     
     - подсушить осадок не более 5 минут при 65°C для удаления капель спирта;
     
     - растворить осадок в 100 мкл деионизированной воды, осторожно встряхивая, полученный раствор ДНК готов для проведения полимеразной цепной реакции (ПЦР);
     
     - хранить при минус 20°С.
     
     4.2. Сорбционный метод выделения ДНК:
     
     - в центрифужные пробирки типа Эппендорф на 1,5 мл внести 300 мг бисера и 70-80 мг анализируемого материала, добавить 0,5 мл 5 мМ Na - cоль ЭДТА и термостатировать 30-60 минут при 65°С;
     
     - к содержимому пробирки добавить 400 мкл лизирующего реагента, перемешать на вортекс до максимально однородного состояния, термостатировать при 65°C 60-120 минут;
     
     - перемешать на вортекс, добавить 500 мкл бидистиллированной воды, перемешать на вортекс;
     
     - центрифугировать 1 минуту при 12000 об/мин, прозрачный супернатант перенести в чистую пробирку;
     
     - добавить 20 мкл сорбента, пробирку поместить на ротатор или перемешивать на вортекс 10 минут при 10-20 об/мин;
     
     - центрифугировать 10 секунд при 12000 об/мин;
     
     - удалить супернатант, к осадку добавить 200 мкл лизирующего реагента, перемешать на вортекс до однородного состояния, центрифугировать 10 секунд при 12000 об/мин;
     
     - удалить супернатант, к осадку добавить 1 мл рабочего раствора солевого буфера, перемешать содержимое пробирки переворачиванием 5-10 раз, центрифугировать 10 секунд при 12000 об/мин;
     
     - удалить супернатант, не задевая осадка;
     
     - к осадку добавить 1 мл рабочего раствора солевого буфера, перемешать на вортекс, центрифугировать 10 секунд при 12000 об/мин, удалить супернатант;
     
     - повторить предыдущий пункт еще раз;
     
     - подсушить осадок при 65°С в течение 4-5 минут;
     
     - к осадку добавить 50 мкл экстракционного раствора, отбор раствора из исходного флакона проводить при постоянном помешивании, не допуская выпадения в осадок гранул ионообменной смолы;
     
     - суспендировать содержимое пробирки на вортекс 5-10 секунд до гомогенного состояния, затем термостатировать 10 минут при 65°С;
     
     - повторно суспендировать пробу на вортекс, центрифугировать 1 минуту при 12000 об/мин;
     
     - раствор ДНК перенести в чистую пробирку, хранить при минус 20°C.
     
     

V. ПЦР с электрофоретической детекцией

     
     5.1. Идентификация видоспецифичной растительной ДНК.
     
     5.1.1. Идентификация ДНК сои, ген лектина:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GCC CTC TAC TCC ACC CCC ATC C 3',
     
     2) 5' GCC CAT CTG CAA GCC TTT TTG TG 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

          
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 118 пар нуклеотидов, приложение 2.1.
     
     5.1.2. Идентификация ДНК кукурузы, ген зеина:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' TGC TTG CAT TGT TCG CTC TCC TAG 3',
     
     2) 5' GTC GCA GTG ACA TTG TGG CAT 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
      - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 329 пар нуклеотидов, приложение 2.2.
     
     5.1.3. Идентификация ДНК картофеля, ген фосфоенолпируват карбоксилазы:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GTC TCC TTG GCT TGT CAT TTT ATG C 3',
     
     2) 5' CAA GTT AGC TGC CAT CAT TCT GGC C 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс и центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 1149 пар нуклеотидов, приложение 2.3.
     
     5.2. Скриниговый анализ.
     
     5.2.1. Метод идентификации промотора 35 S:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GCT CCT ACA AAT GCC ATC A 3',
     
     2) 5' GAT AGT GGG ATT GTG CGT CA 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 195 пар нуклеотидов, приложение 2.4.
     
     5.2.2. Метод идентификации терминатора NOS:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GAA TCC TGT TGC CGG TCT TG 3',
     
     2) 5' TTA TCC TAG TTT GCG CGC TA 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 180 пар нуклеотидов, приложение 2.5.
     
     5.2.3. Метод идентификации маркерного гена npt II:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GGA TCT CCT GCT ATC T 3',
     
     2) 5' GAT CAT CCT GAT CGA C 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс и центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 173 пары нуклеотидов, приложение 2.6.
     
     5.3. Идентификация линий ГМО.
     
     5.3.1. Метод идентификации сои линии 40-3-2:
     
     - 1-й раунд, внешние праймеры:
     
     1) 5'CCA CTG ACG TAA GGG ATG ACG 3',
     
     2) 5'CAT GAA GGA CCG GTG GGA GAT 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы поместить на холод, хранение не более одного часа в холодильнике до проведения 2-го раунда;
     
     - 2-й раунд, внутренние праймеры:
     
     3) 5' ATC CCA CTA TCC TTC GCA AGA 3',
     
     4) 5' TGG GGT TTA TGG AAA TTG GAA 3'.
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,5 мкл в каждую, добавить 0,5 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза, продукт амплификации 169 пар нуклеотидов, приложение 2.7.
     
     5.3.2. Метод идентификации сои линии А2704-12:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GGC GTT CGT AGT GAC TGA GG 3',
     
     2) 5' GTT TTA CAA CGT CGT GAC TGG 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 185 пар нуклеотидов, приложение 2.8.
     
     5.3.3. Метод идентификации сои линии А5547-127.
     
     - праймеры:
     
     1) 5' TGT GGT TAT GGC GGT GCC ATC 3',
     
     2) 5' TGC TAC AGG CAT CGT GGT GTC 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 150 пар нуклеотидов, приложение 2.9.
     
     5.3.4. Метод идентификации кукурузы линии Bt 176:
     
     - 1-й раунд, внешние праймеры:
     
     1) 5' CGG CCC CGA GTT CAC CTT 3',
     
     2) 5' CTG CTG GGG ATG ATG TTG TTG 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс и центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы поместить на холод, хранение не более одного часа в холодильнике до проведения 2-го раунда;
     
     - 2-й раунд, внутренние праймеры:
     
     3) 5' CCG CAC CCT GAG CAG CAC 3',
     
     4) 5' GGT GGC ACG TTG TTG TTC TGA 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,5 мкл в каждую, добавить 0,5 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 189 пар нуклеотидов, приложение 2.10.
     
     5.3.5. Метод идентификации линии MON 810:
     
     - 1-й раунд, внешние праймеры:
     
     1) 5' TAT CTC CAC TGA CGT AAG GGA TGA C 3',
     
     2) 5' TGC CCT ATA ACA CCA ACA TGT GCT T 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - 2-й раунд, внутренние праймеры:
     
     3) 5' ACT ATC CTT CGC AAG ACC CTT CCTC 3',
     
     4) 5' GCA TTC AGA GAA ACG TGG CAG TAA C 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс и центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,5 мкл в каждую, добавить 0,5 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать (30 секунд при 3000 об/мин), при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 149 пар нуклеотидов, приложение 2.11.
     
     5.3.6. Метод идентификации кукурузы линии MON 863:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GTA GGA TCG GAA AGC TTG GTA C 3',
     
     2) 5' TGT TAC GGC CTA AAT GCT GAA CT 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс и центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 84 пары нуклеотидов, приложение 2.12.
     
     5.3.7. Метод идентификации кукурузы линии NK 603:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' AGT AAT GAC CTC GAG TAA GCT TGT TAA 3',
     
     2) 5' AAG AGA TAA CGA GAT CCA CTC AAA CAC T 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 108 пар нуклеотидов, приложение 2.13.
     
     5.3.8. Метод идентификации кукурузы линии Bt 11:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' ССA TTT TTC AGC TAG GAA GTT C 3',
     
     2) 5' TCG TTG ATG TTK GGG TTG TTG TCC 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 110 пар нуклеотидов, приложение 2.14.
     
     5.3.9. Метод идентификации кукурузы Т 25:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GCC AGT TAG GCC AGT TAC CCA 3',
     
     2) 5' TGA GCG AAA CCC TAT AAG AAC CCT 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 149 пар нуклеотидов, приложение 2.15.
     
     5.3.10. Метод идентификации кукурузы линии GA 21:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' ACG GTG GAA GAG TTC AAT GTA TG 3',
     
     2) 5' TCT CCT TGA TGG GCT GCA 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс и центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 270 пар нуклеотидов, приложение 2.16.
     
     5.3.11. Метод идентификации кукурузы линии MIR 604:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GGT ACC CAT TTG GCG CCG AT 3',
     
     2) 5' CAG CGT TGC GGT TCT GTC AG 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР:
     

     
     - состав буферной смеси:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 895 пар нуклеотидов, приложение 2.17.
     
     5.3.12. Метод идентификации кукурузы линии MON 88017:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' GAG CAG GAC CTG CAG AAG CT 3',
     
     2) 5' TCC GGA GTT GAC CAT CCA 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР:
     

     
     - состав буферной смеси:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации - 94 пары нуклеотидов, приложение 2.18.
     
     5.3.13. Метод идентификации сахарной свеклы линии Н7-1:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' TGG GAT CTG GGT GGC TCT AAC T 3',
     
     2) 5' AAT GCT GCT AAA TCC TGA G 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР рассчитанная на 10 проб:
     

          
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации 110 пар нуклеотидов, приложение 2.19.
     
     5.3.14. Метод идентификации риса LL 62:
     
     - праймеры:
     
     1) 5' AGC TGG CGT AAT AGC GAA GAG G 3',
     
     2) 5' TGC TAA CGG GTG CAT CGT CTA 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза в агарозном геле, продукт амплификации 88 пар нуклеотидов, приложение 2.20.
     
     5.3.15. Метод идентификации картофеля, устойчивого к колорадскому жуку сортов Рассет Бурбанк Ньюлив, Супериор Ньюлив, Елизавета 2904/1 kgs, Луговской 1210 amk:
     
     - 1-й раунд, внешние праймеры:
     
     1) 5' CTA CCA CTA AGG ATG TTA TCC 3',
     
     2) 5' ATG CAC TCA CGT AGT CCT CC 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,0 мкл в каждую, добавить 1,0 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - хранение не более одного часа в холодильнике до проведения 2-го раунда;
     
     - 2-й раунд, внутренние праймеры:
     
     3) 5' CTA CCA CTA AGG ATG TTA TCC 3',
     
     4) 5' TTG TAT AGA AGC TCA CGA GG 3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, рассчитанная на 10 проб:
     

     
     - реакционную смесь перемешать на вортекс, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, разлить в пробирки для проведения ПЦР по 24,5 мкл в каждую, добавить 0,5 мкл раствора ДНК в каждую пробирку, перемешать, центрифугировать 30 секунд при 3000 об/мин, при использовании амплификатора с крышкой без подогрева в каждую пробирку добавить каплю минерального масла;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для проведения электрофореза, продукт амплификации - 102 пары нуклеотидов, приложение 2.21.
     
     

VI. Проведение электрофореза в агарозном геле

     
     6.1. Приготовление 2%-ного агарозного геля:
     
     - к 1 г агарозы добавить 50 мл 1х буфера ТВЕ, тщательно перемешать;
     
     - полученный раствор поместить в микроволновую печь на 2-5 мин или прокипятить на водяной бане 15 мин до полного расплавления агарозы;
     
     - расплавленную агарозу охладить до 56°C, добавить 5 мкл бромистого этидия, тщательно перемешать, разлить в подготовленную форму, толщина геля 0,5-0,7 см, через 30-40 минут удалить гребенку;
     
     - готовый гель использовать сразу или хранить в 1х ТВЕ буфере в холодильнике при +4°C.
     
     6.2. Проведение электрофореза:
     
     - 10 мкл реакционной смеси после аплификации внести в лунку геля, в одну из лунок внести маркер молекулярной массы;
     
     - поместить заполненный гель в камеру для электрофореза с буфером 1х ТБЕ, толщина слоя буфера над поверхностью геля ~ 2-3 мм;
     
     - провести электрофорез в режиме постоянного напряжения 100V 70-90 минут;
     
     - гель (без формы) поместить на экран трансиллюминатора;
     
     - документировать результат фореза при помощи гель-документирующей системы, фотокопию геля приложить к отчету по идентификации.
     
     

VII. ПЦР с детекцией результатов методом ферментного
 анализа на биологическом микрочипе

     
     7.1. Используются следующие праймеры:
     
     - на 35S-промотор вируса мозаики цветной капусты:
     
     5 CGG CTA CTC CAA GAA TAT CAA AGA TAC AGT TTC AGA AGA (39 н.о.),
     
     5' CCA TTT TCC TTT TTT ATT GTC CTT TCG ATG AAG TGA CAG A (40 н.о.);
     
     - на маркерный ген gus из бактерии Escherichia coli:
     
     5' ACC GTA CCT CGC ATT ACC CTT ACG CTG AAG AGA (33 н.о.),
     
     5' TGC CCG CTT CGA AAC CAA TGC CTA AAG AGA (30 н.о.);
     
     - на терминатор nos из агробактерии Agrobacterium tumefaciens:
     
     5' GGA CAA GCC GTT TTA CGT TTG GAA CTG ACA GA (32 н.о.),
     
     5' GCC TGA CGT ATG TGC TTA GCT CAT TAA ACT CCA GA (35 н.о.);
     
     - на маркерный ген nptII из транспазона Tn5 бактериального происхождения:
     
     5' GTG ACC CAT GGC GAT GCC TGC TTG C (25 н.о.),
     
     5' ACC CAG CCG GCC ACA GTC GAT GAA TCC AGA (30 н.о.);
     
     - на промотор ocs из агробактерии Agrobacterium tumefaciens:
     
     5' AAA AAG TGG CAG AAC CGG TCA AAC CTA AAA GA (32 н.о.),
     
     5' CGT TAT TAG TTC GCC GCT CGG TGT GTC GTA GA (32 н.о.).
     
     7.2. Набор реактивов для ассиметричной мультиплексной ПЦР (амПЦР) включает:
     
     - сухие смеси, включающие Taq ДНК полимеразу, дезоксинуклеозидтрифосфаты, хлорид магния с конечными концентрациями, соответственно, 1 ед, 200 мкМ и 2,5 млМ, оптимизированную буферную систему для проведения одной стандартной ПЦР:
     
     - растворитель;
     
     - минеральное масло;
     
     - "+" контроль амплификации - 1 пробирка, 0,5 мл.
     
     7.3. Проведение реакции:
     
     - необходимое количество микропробирок с сухими реактивами промаркировать соответствующим образом: "-" контроль", "исследуемые пробы", "+" контроль";
     
     - добавить во все пробирки по 5 мкл праймеров, 10 мкл растворителя;
     
     - в пробирку, которая служит отрицательным контролем, добавить 5 мкл деионизированной воды, в опытные пробирки - по 5 мкл раствора исследуемой ДНК, в пробирку с положительным контролем - 5 мкл раствора контрольной ДНК;
     
     - добавить во все пробирки по 20 мкл минерального масла;
     
     - пробы готовы для проведения амплификации;
     
     - запустить программу амплификации:
     

     
     - после проведения амплификации пробы готовы для осуществления гибридизации.
     
     7.4. Гибридизация ДНК, ферментный анализ на биологическом микрочипе и сканирование результатов:
     
     - набор реактивов для ДНК гибридизации и ферментного анализа содержит 20x SSC - 50 мл, диаминобензидин (ДАБ) - 100 таблеток, конъюгат пероксидазы хрена со стрептавидином - 0,1 мл с концентрацией 1 мг/ мл, 1 пробирка;
     
     - приготовить рабочие разведения раствора 20 х SSC (3M NaCl, 0,3 М цитрат натрия, рН 7,4): 2 х SSC, 0,1% SDS; 0,1x SSC; 0,1x SSC, 0,1% SDS; 0,01 x SSC;
     
     - схема приготовления 100 мл раствора:
     

     
     - микропробирки с продуктами амплификации ДНК центрифугировать 1-2 секунды для сбора пробы на дне пробирки, добавить в каждую микропробирку 5 мкл 20 х SSC и 0,2 мкл 10% SDS, перемешать, центрифугировать 1-2 секунды при 3000 об/мин, распределить полученную смесь по поверхности микрочипа, содержащей зоны иммобилизованных олигонуклеотидов;
     
     - поместить микрочип во влажную камеру, поставить на 1 час в воздушный термостат с температурой 42°C;
     
     - по окончании реакции капли смыть буфером 2 х SSC, 0,1% SDS, тщательно промыть чип растворами 2 х SSC, 0,1% SDS - 1 раз 5 минут, 0,1 х SSC, 0,1% SDS - 2 раза по 5 минут, 0,1 х SSC - 5 раз по 1 минуте, - 0,01 х SSC в течение 10 секунд.
     
     7.5. Проведение ферментного анализа:
     
     - исходный стрептавидин-пероксидазный конъюгат разбавить в 200 раз буфером 1 х SSC, содержащим 1% БСА (бычий сывороточный альбумин), из расчета 25 мкл на микрочип;
     
     - нанести 25-30 мкл разведенного конъюгата на рабочую зону микрочипа и поместить его на 30 минут во влажную камеру при комнатной температуре;
     
     - смыть конъюгат раствором 1 х SSC;
     
     - залить микрочип раствором 2 х SSC, промыть 5 минут;
     
     - промыть микрочип раствором 1 х SSC;
     
     - непосредственно перед применением приготовить раствор субстрата - диаминобензидина (ДАБ), для этого растворить таблетку ДАБ в 1 см буфера 0,1 х SSC, добавить 30 мм 3%-ного раствора пероксида водорода и перемешать, раствор использовать немедленно;
     
     - залить рабочую зону микрочипа раствором субстрата, выдержать от 2 до 10 минут при комнатной температуре;
     
     - в случае положительной реакции появляются коричневые пятна окисленного субстрата;
     
     - промыть микрочип дистиллированной водой, встряхнуть капли воды и поместить в термостат 42°C на 5-10 минут, после сушки микрочип с окрашенными зонами хранить в темном месте.
     
     7.6. Сканирование биологических микрочипов:
     
     - осуществлять с применением аппаратно-программного комплекса для анализа биологических микрочипов типа "ДЕГМИГЕН-001" и компьютерной программы для анализа изображений;
     
     - в соответствии с руководством по эксплуатации, поставляемым в комплекте с аппаратно-программным комплексом подготовить сканер микрочипов к работе;
     
     - поместить микрочип в рамку для сканирования, зафиксировать его и закрыть рамку;
     
     - запустить программу сканирования, функционирующую в диалоговом режиме, дождаться появления на мониторе приглашения к сканированию и только после этого вставить рамку с микрочипом в приемное окно детектора;
     
     - после завершения сканирования микрочипа сохранить изображение, присвоив файлу соответствующее имя.
     
     7.7. Анализ изображений биочипов:
     
     - запустить программу обработки изображения микрочипа, ввести оцифрованное изображение в программу, для этого выбрать опцию "Файл", открыть изображение, в появившемся диалоговом окне выбрать формат, в котором представлены изображения, и выбрать в списке нужный файл, изображение появится в основном окне программы;
     
     - провести операцию разметки матрицы, чтобы совместить центры измерительных зондов с центрами пятен решетки в изображении, для этого выбрать опцию "Анализ", "Разметка матрицы";
     
     - разметка начинается с рисования прямоугольника, боковые стороны которого проходят через центры узлов крайних столбцов, для этого нужно щелкнуть левой кнопкой мыши в центре левого верхнего пятна/ячейки, затем, держа кнопку нажатой, переместить правую нижнюю вершину появившегося прямоугольника в центр нижнего правого узла;
     
     - в результате предварительной разметки на экране появится четырехугольник с внутренними линиями, расположенными равномерно, в соответствии с заданным числом столбцов матрицы, чтобы завершить разметку и закрыть диалоговое окно, нужно нажать клавишу "Принять";
     
     - после завершения базовой разметки провести автоматическую коррекцию положения зондов, для этого в меню выбрать опцию "Настройки / Автоматическая подстройка";
     
     - для анализа результатов нужно выбрать опцию меню "Анализ" - "Показать результаты", по окончании измерений программа предоставляет возможность подготовки и распечатки протокола испытаний, для этого нужно выбрать опцию меню "Файл", и затем "Заполнить протокол", после этого появится окно с формой для заполнения, после того как она будет заполнена, нажать кнопку "Выход".
     
     7.8. Интерпретация результатов:
     
     - появление регистрируемого компьютерной программой оптического сигнала в одной, нескольких или во всех пяти зонах гибридизации, содержащих иммобилизованные олигонуклеотиды, указывает на присутствие рекомбинантной ДНК, свидетельствующей о наличии ГМО растительного происхождения в анализируемом образце;
     
     - отсутствие регистрируемого оптического сигнала во всех пяти гибридизационных зонах, содержащих иммобилизованные олигонуклеотиды, указывает на отсутствие рекомбинантной ДНК, что свидетельствует о том, что анализируемый образец не имеет ГМО растительного происхождения;
     
     - появление оптического сигнала в зоне гибридизации при использовании отрицательного контроля амплификации, свидетельствует о получении ложноположительного результата, причиной может быть загрязнение реактивов и/или оборудования, в этом случае необходимо обработать поверхности лабораторных столов и оборудования раствором 1Н соляной кислоты, заменить реактивы на свежеприготовленные и повторить анализ;
     
     - отсутствие оптического сигнала при использовании положительного контроля амплификации, свидетельствует о получении ложноотрицательного результата, причиной могут быть потеря активности одного из компонентов реакционной смеси для амПЦР и/или гибридизации с применением ферментного анализа на биологическом микрочипе, в этом случае необходимо заменить реактивы на свежеприготовленные и повторить анализ.
     
     

VIII. Количественный анализ методом ПЦР в реальном времени

     
     8.1. Метод количественного определения генетически модифицированной сои:
     
     - метод позволяет количественно определить рекомбинантную ДНК, характерную для генетически модифицированных линий сои в пищевых продуктах методом ПЦР в реальном времени;
     
     - анализ проводится по гену лектина, который присутствует в геноме всех линий сои, и универсальной последовательности 35 S промотора вируса мозаики цветной капусты, который присутствует в геноме всех генетически модифицированных линий сои;
     
     - праймеры на ген лектина:
     
     1) 5' TCC ACC CCC ATC CAC ATT T 3',
     
     2) 5' GGC ATA GAA GGT GAA GTT GAA GGA 3',
     
     3) 5'-FAM-AAC CGG TAG CGT TGC CAG CTT CG-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 81 пара нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' GCC TCT GCC GAC AGT GGT 3',
     
     5) 5' AAG ACG TGG TTG GAA CGT CTT C 3',
     
     6) 5'-FAM-CAA AGA TGG ACC CCC ACC CAC G-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 82 пары нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК сои:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - при проведении исследования использовали стандартные образцы состава генетически модифицированной сои;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - результаты исследования, приложение 2.22.
     
     8.2. Метод количественного определения генетически модифицированной кукурузы:
     
     - метод позволяет количественно определить рекомбинантную ДНК, характерную для генетически модифицированных линий кукурузы, в пищевых продуктах методом ПЦР в реальном времени;
     
     - анализ проводится по гену инвертазы кукурузы, который присутствует в геноме всех линий кукурузы, и универсальной последовательности 35 S промотора вируса мозаики цветной капусты, который присутствует в геноме всех генетически модифицированных линий за исключением GA 21.
     
     - праймеры на ген инвертазы кукурузы:
     
     1) 5' CAC TCC ATC GTG GAG AGC TT 3',
     
     2) 5' GGC GTT GTT GAA GAG GAA GA 3',
     
     3) 5'-FAM-TAC CCC ACA CGA GCC ATC TAC GAC T-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 111 пар нуклеотидов;
     
     - праймеры, на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' CGT CTT CAA AGC AAG TGG ATT G 3',
     
     5) 5' TCT TGC GAA GGA TAG TGG GAT T 3',
     
     6) 5'-FAM-TCT CCA CTG ACG TAA GGG ATG ACG CA-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 79 пар нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК кукурузы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - при проведении исследования использовали стандартные образцы состава генетически модифицированной кукурузы;
     
     - условия амплификации:
     

     
     - результат исследований, приложение 2.23.
     
     8.3. Метрологические характеристики метода:
     
     - границы интервала, в котором погрешность определения находится с доверительной вероятностью Р = 0,95, составляют от 0,1% до 5%, нижнюю и верхнюю границы погрешности определяют с использованием сертифицированных стандартных образцов состава и свойств, стандартные отклонения повторяемости результатов () составляет от 0,067 (для стандарта 0,1%) до 0,540 (для стандарта 5%), что соответствует погрешности сертифицированных стандартных образцов состава ГМО растительного происхождения;
     
     - результаты анализа образцов принимают, если коэффициент корреляции калибровочной прямой, построенной по сертифицированным стандартным образцам состава ГМО растительного происхождения, по методу наименьших квадратов (R) > 0,97.
     
     8.4. Метод количественного определения сои линии 40-3-2:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена лектина и генетической конструкции, характерной для сои линии 40-3-2;
     
     - используются зонды, специфичные к трансгену и гену лектина, меченые красителями FAM и VIC соответственно;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной сои:- 5,0%, 2,0%, 1,0%, 0,5% и 0,00%.
     
     - праймеры на ген лектина сои:
     
     1) 5' TCC ACC CCC ATC CAC ATT T3',
     
     2) 5' GGC ATA GAA GGT GAA GTT GAA GGA 3',
     
     3) 5'-VIC-AAC CGG TAG CGT TGC CAG CTT CG-TAMRA-3';
     
     - на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' GCC ATG TTG TTA ATT TGT GCC AT 3'
     
     5) 5' GAA GTT CAT TTC ATT TGG AGA GGA C 3'
     
     6) 5'-FAM-CTT GAA AGA TCT GCT AGA GTC AGC TTG TCA GCG-TAMRA-3'
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.5. Метод количественного определения сои линии А2704-12:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени, с определением гена лектина и области ДНК, специфичной трансформационному событию А2704-12;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной сои А2704-12 : 0,1%, 0,4%, 0,9%, 2,0%; 3,3%;
     
     - праймеры на ген лектина сои:
     
     1) 5' CAC CTT TCT CGC ACC AAT TGA CA3',
     
     2) 5' TCA AAC TCA ACA GCG ACG AC 3',
     
     3) 5' FAM-CCA CAA ACA CAT GCA GGT TAT CTT GG-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 105 пар нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' GCA AAA AAG CGG TTA GCT CCT3',
     
     5) 5' ATT CAG GCT GCG CAA CTG TT 3',
     
     6) 5'-FAM-CGG TCC TCC GAT CGC CCT TCC-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 64 пары нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК сои:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.6. Метод количественного определения кукурузы линии MON 810:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез группы белков, присущих для всех линий кукурузы (hmg) и области ДНК, специфичной трансформационному событию MON 810, на границе генома кукурузы и элемента генетической конструкции промотора 35 S из вируса мозаики цветной капусты;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной кукурузы - < 0,02%, 0,1%, 0,5%, 1,0%, 2,0%, 5,0%;
     
     - праймеры на ген hmg:
     
     1) 5' TTG GAC TAG AAA TCT CGT GCC CA 3',
     
     2) 5' GCT ACA TAG GGA GCC TTG TCC T 3',
     
     3) 5'-FAM-CAA TCC ACA CAA ACG CAC GCG TA-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 79 пар нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' TCG AAG GAC GAA GGA CTC TAA CGT 3',
     
     5) 5' GCC ACC TTC CTT TTC CAC TAT CTT 3',
     
     6) 5'-FAM -AAC ATC CTT TGC CAT TGC CCA GC -TAMRA-3',
     
     длина ампликона 92 пары нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК кукурузы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.7. Метод количественного определения кукурузы линии MON 863:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез алкогольдегидрогеназы 1 (adhl 1), присущей для всех линий кукурузы и области ДНК, специфичной трансформационному событию MON 863, на границе генома кукурузы и элемента генетической конструкции;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной кукурузы: 0,01%, 1,0%, 5,0%, 10,0%;
     
     - праймеры на ген adhl 1:
     
     1) 5' CCA GCC TCA TGG CCA AAG 3',
     
     2) 5' CCT TCT TGG CGG CTT ATC TG 3',
     
     3) 5'-FAM-CTT AGG GGC AGA CTC CCG TGT TCC CT-3,'
     
     длина ампликона 84 пары нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' GTA GGA TCG GAA AGC TTG GTA C 3',
     
     5) 5' TGT TAC GGC CTA AAT GCT GAA CT 3',
     
     6) 5'-FAM-TGA ACA CCC ATC CGA ACA AGT AGG GTC A-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 70 пар нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК кукурузы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.8. Метод количественного определения кукурузы линии NK 603:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез алкогольдегидрогеназы 1 (adhl 1), присущей для всех линий кукурузы и области ДНК, специфичной трансформационному событию NK 603, на границе генома кукурузы и элемента генетической конструкции;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной кукурузы: 0,1%, 0,49%, 0,98%, 1,96%, 4,91%;
     
     - праймеры на ген adhl 1:
     
     1) 5' CCA GCC TCA TGG CCA AAG 3',
     
     2) 5' CCT TCT TGG CGG CTT ATC TG 3',
     
     3) 5'-FAM-CTT AGG GGC AGA CTC CCG TGT TCC CT-3',
     
     длина ампликона 70 пар нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' ATG AAT GAC CTC GAG TAA GCT TGT TAA 3',
     
     5) 5' AAG AGA TAA CAG GAT CCA CTC AAA CAC T 3',
     
     6) 5'-FAM-TGG TAC CAC GCG ACA CAC TTC CAC TC-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 108 пар нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК кукурузы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.9. Метод количественного определения кукурузы линии Bt 11:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез алкогольдегидрогеназы 1 (adhl 1), присущей для всех линий кукурузы и области ДНК, специфичной трансформационному событию Bt 11, на границе генома кукурузы и элемента генетической конструкции;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной кукурузы:0,1%, 0,3%, 0,7%, 1,0%, 1,3%, 2,0%;
     
     - праймеры на ген adhl 1:
     
     1) 5' СGT CGT TTC CCA TCT CTT CCT CC 3',
     
     2) 5' CCA CTC CGA GAC CCT CAG TC 3',
     
     3) 5'-FAM-AAT CAG GGC TCA TTT TCT CGC TCC TCA -TAMRA-3';
               
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' GCG GAA CCC CTA TTT GTT TA 3',
     
     5) 5' TCC AAG AAT CCC TCC ATG AG 3',
     
     6) 5'-FAM-AAA TAC ATT CAA ATA TGT ATC CGC TCA-TAMRA-3';
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК кукурузы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.10. Метод количественного определения кукурузы линии T 25:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез алкогольдегидрогеназы 1 (adhl 1), присущей для всех линий кукурузы и области ДНК, специфичной трансформационному событию Т 25, на границе генома кукурузы и элемента генетической конструкции;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной кукурузы: 0,15%, 0,40%, 0,90%, 2,00%, 3,30%;
     
     - праймеры на ген adhl 1:
     
     1) 5' CGT CGT TTC CCA TCT CTT CCT CCT 3',
     
     2) 5' CCA CTC CGA GAC CCT CAG TC 3',
     
     3) 5'-FAM-AAT CAG GGC TCA TTT TCT CGC TCC TCA-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 136 пар нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' ACA AGC GTG TCG TGC TCC AC 3',
     
     5) 5' GAC ATG ATA CTC CTT CCA CCG 3',
     
     6) 5'-FAM-TCA TTG AGT CGT TCC GCC ATT GTC G-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 102 пары нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК кукурузы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.11. Метод количественного определения кукурузы линии GA 21:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез алкогольдегидрогеназы 1 (adhl 1), присущей для всех линий кукурузы и области ДНК, специфичной трансформационному событию GA21, на границе генома кукурузы и элемента генетической конструкции;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной кукурузы: 0,1%, 0,49%, 0,98%, 1,3%, 1,71%, 4,26% ;
     
     - праймеры на ген adhl 1:
     
     1) 5' ССA GCC TCA TGG CCA AAG 3',
     
     2) 5' CCT TCT TGG CGG CTT ATC TG 3',
     
     3) 5'-FAM-CTT AGG GGC AGA CTC CCG TGT TCC CT-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 70 пар нуклеотидов;
          
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' CTT ATC GTT ATG CTA TTT GCA ACT TTA GA 3',
     
     5) 5' TGG CTC GCG ATC CTC CT 3',
     
     6) 5'-FAM-CAT ATA CTA ACT CAT ATC TCT TTC TCA ACA GCA GGT GGG T-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 112 пар нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК кукурузы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.12. Метод количественного определения кукурузы линии MIR 604:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез алкогольдегидрогеназы 1 (adhl 1), присущей для всех линий кукурузы и области ДНК, специфичной трансформационному событию MIR 604, на границе генома кукурузы и элемента генетической конструкции;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM и VIC;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава и свойств генетически модифицированной кукурузы: менее 0,09%, 0,1%, 0,98%, 9,85%;
     
     - праймеры на ген adhl 1:
     
     1) 5' CGT CGT TTC CCA TCT CTT CCT CC 3',
     
     2) 5' CCA CTC CGA GAC CCT CAG TC 3',
     
     3) 5'-VIC-AAT CAG GGC TCA TTT TCT CGC TCC TCA-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 136 пар нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' GCG CAC GCA ATT CAA CAG 3',
     
     5) 5' GGT CAT AAC GTG ACT CCC TTA ATT CT 3',
     
     6) 5'-FAM -AGG CGG GAA ACG ACA ATC TGA TCA TG-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 76 пар нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК кукурузы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.13. Метод количественного определения риса линии LL 62:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез фосфолипазы Д (PLD), присущей для всех линий риса, и области ДНК, специфичной трансформационному событию LL 62, на границе генома риса и элемента генетической конструкции;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM;
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированного риса: менее 0,09%, 0,45%, 0,9%, 1,8%, 3,6%;
     
     - праймеры на ген PLD:
     
     1) 5' TGG TGA GCG TTT TGC AGT CT 3',
     
     2) 5' CTG ATC CAC TAG CAG GAG GTC C 3',
     
     3) 5'-FAM-TGT TGT GCT GCC AAT GTG GCC TG -TAMRA-3',
     
     длина ампликона 64 пары нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' AGC TGG CGT AAT AGC GAA GAG G 3',
     
     5) 5' TGC TAA CGG GTG CAT CGT CTA 3',
     
     6) 5'-FAM -CGC ACC GAT TAT TTA TAC TTT TAG TCC ACC-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 88 пар нуклеотидов;
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК риса:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

     
     8.14. Метод количественного определения сахарной свеклы линии H7-1:
     
     - основан на ПЦР в реальном времени с определением гена, кодирующего синтез глютамин синтетазы (GS), присущей для всех линий сахарной свеклы и области ДНК, специфичной трансформационному событию Н7-1, на границе генома сахарной свеклы и элемента генетической конструкции;
     
     - используются зонды, меченые красителем FAM:
     
     - для построения калибровочной прямой используются стандартные образцы состава генетически модифицированной сахарной свеклы: менее 0,1%, 0,5%, 0,9%, 2,0%, 5,0%;
     
     - праймеры на ген GS :
     
     1) 5' GAC CTC CAT ATT ACT GAA AGG AAG 3',
     
     2) 5' GAG TAA TTG CTC CAT CCT GTT CA 3',
     
     3) 5'-FAM-CTA CGA AGT TTA AAG TAT GTG CCG CTC-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 121 пара нуклеотидов;
     
     - праймеры на целевую последовательность ГМО:
     
     4) 5' TGG GAT CTG GGT GGC TCT AAC T 3',
     
     5) 5' AAT GCT GCT AAA TCC TGA G 3',
     
     6) 5'-FAM-AAG GCG GGA AAC GAC AAT CT-TAMRA-3',
     
     длина ампликона 110 пар нуклеотидов:
     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение ДНК сахарной свеклы:
     

     
     - реакционная смесь для проведения ПЦР, количественное определение рекомбинантной ДНК:
     

     
     - условия амплификации:
     

IX. Методы идентификации и количественного определения ГМО
с использованием тест-систем

     
     9.1. Метод количественного определения генно-инженерно-модифицированной сои и кукурузы с использованием наборов "TaqMan GMO Soy Detection Kit" и "TaqMan GMO Maize Detection Kit":
     
     - наборы реактивов предназначены для количественного определения в пищевых продуктах генно-инженерно-модифицированной кукурузы или сои;
     
     - метод основан на ПЦР в реальном времени;
     
     - амплифицируется участок эндогенной ДНК, характерной для всех линий кукурузы или сои, и участок рекомбинантной ДНК в ходе двух независимых реакций с использованием соответствующих праймеров и зондов, меченых флуоресцентным красителем;
     
     - регистрация флуоресценции красителей осуществляется приборами типа ABI-PRISM 7000, Rotor Gene 3000 и анализируется с использованием программного обеспечения приборов;
     
     - относительное содержание ГМО в пищевом продукте рассчитывается с использованием стандартных образцов состава, путем сравнения результатов измерения флуоресценции красителя FAM, специфичного для ГМО, с результатами измерения флуоресценции красителя VIC, специфичного для всех линий сои или кукурузы;
     
     - выделение ДНК из стандартных образцов состава и из исследуемых образцов осуществляется одновременно одним методом с помощью СТАВ или набора реактивов "ДНК-сорб-С".
     
     9.2. Метод идентификации и количественного определения ГМО с использованием наборов "Ампликвант ГМ соя", "Ампликвант ГМ кукуруза", "АмплиСенс ГМ соя FTR", "АмплиСенс ГМ кукуруза FTR", разработанных ФГУН Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора.
     
     9.2.1. Набор реактивов "Ампликвант ГМ соя":
     
     - предназначен для количественного определения генно-инженерно-модифицированной сои;
     
     - метод основан на ПЦР в реальном времени;
     
     - амплифицируется участок эндогенной ДНК, характерной для всех линий сои, и участок рекомбинантной ДНК, промотора 35 S из вируса мозаики цветной капусты, в ходе двух независимых реакций с использованием соответствующих праймеров и зондов, меченых флуоресцентным красителем;
     
     - регистрация флуоресценции красителей осуществляется приборами типа ABI-PRISM 7000, Rotor Gene 3000 и анализируется с использованием программного обеспечения приборов;
     
     - относительное содержание ГМО в пищевом продукте рассчитывается с использованием стандартных образцов состава, путем сравнения результатов измерения флуоресценции красителя FAM, специфичного для ГМО, с результатами измерения флуоресценции красителя VIC, специфичного для всех линий сои;
     
     - выделение ДНК из стандартных образцов состава и из исследуемых образцов осуществляется одновременно одним методом с помощью СТАВ или набора реактивов "ДНК-сорб-С".
     
     9.2.2. Набор реактивов "Ампликвант ГМ кукуруза":
     
     - предназначен для количественного определения генно-инженерно-модифицированной кукурузы;
     
     - метод основан на ПЦР в реальном времени;
     
     - амплифицируется участок эндогенной ДНК, характерной для всех линий кукурузы, и участок рекомбинантной ДНК, промотора 35 S из вируса мозаики цветной капусты, в ходе двух независимых реакций с использованием соответствующих праймеров и зондов, меченых флуоресцентным красителем;
     
     - регистрация флуоресценции красителей осуществляется приборами типа ABI-PRISM 7000, Rotor Gene 3000 и анализируется с использованием программного обеспечения приборов;
     
     - относительное содержание ГМО в пищевом продукте рассчитывается с использованием стандартных образцов состава путем сравнения результатов измерения флуоресценции красителя FAM, специфичного для ГМО, с результатами измерения флуоресценции красителя VIC, специфичного для всех линий кукурузы;
     
     - выделение ДНК из стандартных образцов состава из исследуемых образцов осуществляется одновременно одним методом с помощью СТАВ (или набора реактивов "ДНК-сорб-С".
     
     9.2.3. Набор реактивов "АмплиСенс ГМ соя FRT":
     
     - предназначен для идентификации генно-инженерно-модифицированной сои в пищевых продуктах и растительном сырье методом ПЦР в реальном времени;
     
     - анализ представляет собой проведение трех ПЦР в одной пробирке, для каждой из которых используются специфичные праймеры и меченый флуоресцентными красителями зонд;
     
     - в двух реакциях выявляются последовательности ДНК, специфичные для промотора 35S из вируса мозаики цветной капусты и терминатора NOS из Agrobactetium tumefaciens, третья предназначена для амплификации эндогенной ДНК, специфичной для всех линий сои.
     
     - выделение ДНК осуществляется с помощью СТАВ или набора реактивов "ДНК-сорб-С";
     
     9.2.4. Набор реактивов "АмплиСенс ГМ кукуруза FRT":
     
     - предназначен для идентификации генно-инженерно-модифицированной кукурузы в пищевых продуктах и растительном сырье методом ПЦР в реальном времени;
     
     - анализ представляет собой проведение трех ПЦР в одной пробирке, для каждой из которых используются специфичные праймеры и меченый флуоресцентными красителями зонд;
     
     - в двух реакциях выявляются последовательности ДНК, специфичные для промотора 35S из вируса мозаики цветной капусты и терминатора NOS из Agrobactetium tumefaciens, третья предназначена для амплификации эндогенной ДНК, специфичной для всех линий кукурузы.
     
     - выделение ДНК осуществляется с помощью СТАВ или набора реактивов "ДНК-сорб-С";
     
     9.2.5. Выделение ДНК с использованием набора реактивов "ДНК-сорб-С":
     
     - буфер для лизирующего реагента и раствор для отмывки 1 прогреть при 64°C до полного растворения кристаллов;
     
     - в каждую пробирку внести по 400 мкл буфера для лизирующего реагента и по 17 мкл лизирующего реагента, тщательно перемешать;
     
     - инкубировать при 64°C 1 час, периодически встряхивая на вортекс ;
     
     - центрифугировать 5 минут при 12000-14000 об/мин;
     
     - отобрать и перенести надосадочную жидкость в объеме 200-350 мкл в чистые пробирки;
     
     - центрифугировать 5 секунд при 5000 об/мин;
     
     - тщательно ресуспендировать сорбент на вортекс, в каждую пробирку добавить по 25 мкл ресуспендированного сорбента, перемешать на вортекс, оставить в штативе на 10-15 минут, перемешивая каждые 2 минуты;
     
     - центрифугировать 1 минуту при 5000 об/мин, удалить супернатант;
     
     - добавить по 300 мкл раствора для отмывки 1, перемешать на вортекс до полного ресуспендирования сорбента, центрифугировать 1 минуту 5000 об/мин;
     
     - удалить супернатант;
     
     - добавить по 500 мкл раствора для отмывки 2, перемешать на вортекс до полного ресуспендирования сорбента, центрифугировать 1 минуту при 10000-12000 об/мин, отобрать супернатант;
     
     - повторить процедуру отмывки, отобрать супернатант полностью, поместить пробирки в термостат 64°C на 5-10 минут для подсушивания сорбента, при этом крышки пробирок должны быть открыты;
     
     - добавить по 50 мкл ТЕ-буфера для элюции ДНК, перемешать на вортекс;
     
     - поместить в термостат 64°C на 5-8 минут, периодически встряхивая на вортекс;
     
     - центрифугировать 1 минуту при 12000-14000 об/мин;
     
     - раствор ДНК хранить в течение 1 недели при температуре от 2 до 8С и в течение 1 года - при температуре минус 20С.
     
     9.3. Методы количественного определения сои линии 40-3-2, кукурузы линии GA 21, кукурузы линии NK 603, кукурузы линии MON 863, разработанные Центром "Биоинженерия" РАН.
     
     9.3.1. Наборы реактивов для количественного определения сои линии 40-3-2, кукурузы линии GA 21, кукурузы линии NK 603, кукурузы линии MON 863 методом ПЦР в реальном времени:
     
     - в состав каждого набора входят 2 пробирки матричной реакционной смеси, 1 пробирка с термостабильной полимеразой, 8 пробирок со стандартными разведениями рекомбинантной ДНК;
     
     - реакционная смесь на одну пробу содержит 9,25 мкл матричной реакционной смеси, 0,75 мкл термостабильной полимеразы, 32,0 мкл деионизированной воды, конечный объем каждой пробы - 50 мкл;
     
     - реакционную смесь разлить в пробирки по 42 мкл на пробу;
     
     - добавить 8 мкл раствора ДНК в следующем порядке - контроль без ДНК, ДНК 0%, ГМО 0,5%, ГМО 100%, исследуемые образцы;
     
     - центрифугировать;
     
     - условия амплификации: 94?C - 9 мин - 1 цикл, (94°C - 30 сек) + (62°C - 30 сек) + (72°C - 1 мин) - 40 циклов;
     
     - наборы реактивов оптимизированы для работы на амплификаторах типа ABI Prism 7000/7700.
     
     9.3.2. Метод выделения ДНК с применением технологии Wizard, Promega:
     
     - навеску исследуемого продукта массой 100 мг поместить в микроцентрифужную пробирку типа Эппендорф вместимостью 1,5 мл;
     
     - добавить 300 мкл - буфера I (50 мМ Трис НСl, рН - 8,0; 10 мМ ЭДТА; 50 мкг/мл панкреатической РНКазы свободной от ДНКаз, 3 М гуанидин тиоцианата) при комнатной температуре;
     
     - растереть пробу в пробирке пестиком до гомогенного состояния;
     
     - добавить 400 мкл буфера II (2% додецилсульфат натрия, 0.2 М NaOH) и перемешать на вортекс;
     
     - инкубировать при 65°C 30 минут, перемешать на вортекс, охладить до комнатной температуры;
     
     - добавить 400 мкл буфера III (5М ацетат калия, рН 4,5), перемешать на вортекс 2 минуты;
     
     - центрифугировать 10 минут при 13000 об/мин;
     
     - надосадок отобрать и перенести в чистую пробирку типа Эппендорф вместимостью 1,5 мл, добавить смолу Wizard MaxiPreps из расчета 100 мкл смолы на 200 мкл надосадочной жидкости и перемешать на вортекс;
     
     - при помощи стерильного шприца емкостью 2 мл прокачать смесь через микроцентрифужную колонку;
     
     - стерильным шприцом емкостью 2 мл прокачать через микроцентрифужную колонку 2 мл промывочного буфера (0.2 М NaCl, 20 мМ Трис HCl, pH-8.0, 5 мМ ЭДТА смешать в соотношении 5:7 с 96% этанолом);
     
     - поместить микроколонку в микроцентрифужную пробирку типа Эппендорф вместимостью 1,5 мл;
     
     - центрифугировать 1 минуту при 13000 об/мин;
     
     - поместить микроколонку в чистую микроцентрифужную пробирку типа Эппендорф вместимостью 1,5 мл;
     
     - добавить в колонку 100 мкл деионизованной воды, нагретой до 65?С, центрифугировать 15 секунд при 13000 об/мин;
     
     - измерить концентрацию раствора ДНК и довести ее до 10 нг/мкл;
     
     - раствор ДНК хранить при минус 20°C.
     
     9.4. Количественное определение сои линии 40-3-2, кукурузы линий GA 21, MON 810, T-25, Bt-176, Bt-11 с использованием наборов реагентов GeneScan Analytics GmbH.
     
     9.4.1. Наборы реактивов для определения сои линии 40-3-2 (GMOQuant Roundup Ready Soy), кукурузы линии Bt-176, (GMOQuant Maximizer Bt 176 corn), кукурузы линии Bt-11 (GMOQuant Bt-11 Corn), кукурузы линии MON 810 (GMOQuant YieldCard MON 810), кукурузы линии Т-25 (GMOQuant LibertyLink T25 Corn), кукурузы линии GA 21, (GMOQuant Roundup Ready GA 21 Corn):
     
     - используется реакционная смесь, позволяющая амплифицировать участок эндогенной ДНК, характерной для кукурузы или сои и реакционная смесь, позволяющая амплифицировать участок рекомбинантной ДНК;
     
     - каждая реакционная смесь содержит соответствующие праймеры и зонд, меченый флуоресцентным красителем FAM, специфичный для ГМО и VIC, специфичный для сои или кукурузы;
     
     - интенсивность флуоресценции измеряют с помощью приборов типа ABI-PRISM 7000, iCycler iQ и анализируют с применением программного обеспечения приборов.
     
     9.4.2. Метод выделения ДНК с помощью набора реагентов "GENESpin":
     
     - набор "GENESpin" предназначен для выделения геномной ДНК из пищевых продуктов;
     
     - исследуемый образец пищевого продукта гомогенизировать, добавить лизирующий буфер, содержащий денатурирующие агенты и детергенты;
     
     - лизат центрифугировать;
     
     - добавить связывающий буфер и этанол для создания оптимальных условий осаждения ДНК на фильтре со специально подобранным силикагелем;
     
     - промыть буфером для удаления потенциальных ингибиторов ДНК-полимеразы;
     
     - ДНК элюировать водой или буфером, хранить при минус 20°C.
     
     9.5. Методы количественного определения сои линии 40-3-2, кукурузы линии MON 810, разработанные ГУ ВНИИ сельскохозяйственной биотехнологии РАСХН:
     
     9.5.1. Принцип методов:
     
     - для количественного определения ГМО одновременно проводятся две независимые реакции в одной пробирке, одна реакция позволяет обнаруживать ДНК сои или кукурузы, другая - последовательность, специфичную для сои линии 40-3-2 или кукурузы линии MON 810;
     
     - для обнаружения ДНК сои или кукурузы используется зонд, меченый красителем R6G, для обнаружения генетической конструкции - красителем FAM или ROX в зависимости от типа прибора;
     
     - интенсивность флуоресценции измеряют с помощью приборов типа АНК-32, ABI-PRISM 7000, iCycler iQ и анализируют с применением программного обеспечения приборов;
     
     - определение процентного содержания ГМО осуществляется с использованием калибровочных образцов (КО), которые представляют собой смеси ДНК растения дикого типа (0%) и ДНК ГМО (100%) в определенном процентном соотношении, разность значений пороговых циклов двух реакций для калибровочных образцов используется для построения калибровочной прямой. С помощью калибровочной прямой рассчитывается процентное содержание ДНК ГМО в анализируемых пробах;
     
     9.5.2. Метод выделения ДНК "Сорб-ГМО":
     
     - измельченные навески образцов перенести в одноразовые микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 мл или 2,0 мл;
     
     - внести в каждую пробирку по 600 мкл лизирующего буфера и 10 мкл лизирующего реагента, тщательно перемешать;
     
     - инкубировать 50-60 минут при 65°С, периодически перемешивая на вортекс;
     
     - внести в каждую пробирку по 500 мкл хлороформа, интенсивно перемешать, центрифугировать 10 минут при 12000-14000 об/мин;
     
     - верхнюю водную фазу в объеме 300 мкл аккуратно, не захватывая хлороформ и межфазный слой, перенести в пробирку с сорбентом, интенсивно перемешать на вортекс до полного ресуспензирования сорбента, инкубировать при комнатной температуре 10 минут, периодически встряхивая;
     
     - центрифугировать суспензию при 10000 об/мин 1 минуту, удалить супернатант;
     
     - добавить к осадку 500 мкл промывочного раствора А, перемешать на вортекс до максимального ресуспензирования сорбента, инкубировать при комнатной температуре 2-3 минуты, периодически встряхивая;
     
     - центрифугировать при 7000 об/мин 30 секунд, удалить супернатант;
     
     - добавить к осадку 500 мкл промывочного раствора Б., перемешать на вортекс до максимального ресуспензирования сорбента;
     
     - центрифугировать суспензию при 7000 об/мин 30 секунд, удалить супернатант;
     
     - добавить к осадку 500 мкл промывочного раствора В, перемешать на вортекс до максимального ресуспензирования сорбента;
     
     - центрифугировать при 7000 об/мин 30 секунд удалить супернатант;
     
     - поместить пробирки с открытыми крышками в термостат при температуре 65°С на 5 минут для испарения жидкости;
     
     - к сухому осадку добавить 100 мкл ТЕ буфера, перемешать на вортекс, инкубировать 10 минут при температуре 65°С, перемешивая каждые 2 минуты;
     
     - центрифугировать при 12000-14000 об/мин 2 минуты.
     
     - чистую надосадочную жидкость перенести в чистую пробирку объемом 0,5-1,5 мл, не захватывая сорбент.
     
     9.5.3. Порядок проведения исследований:
     
     - взять необходимое количество пробирок с реакционной смесью из тест-системы из расчета N + 8, где N - количество анализируемых образцов;
     
     - после размораживания реакционной смеси, центрифугировать пробирки 30-60 секунд при более 4000 об/мин;
     
     - внести в пробирки по 2 мкл исследуемых образцов и в последнюю очередь калибровочных образцов сои или кукурузы в двух повторах, перемешать многократным пипетированием, поместить пробирки в амплификатор;
     
     - программа амплификации для сои: 10 мин/95°С, 20 сек/95°С, 50 сек/62°С съемка 50 циклов, 25°С - хранение;
     
     - программа амплификации для кукурузы: 10 мин/95°С, 20 сек/95°С, 50 сек/60°С съемка 50 циклов, 25°С - хранение.
     
     9.6. Для определения ГМО растительного происхождения допустимо использование тест-систем с техническими характеристиками, аналогичными указанным выше и разрешенными для использования в установленном порядке.
     
     

Приложение 2.1

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам
идентификации ДНК сои (ген лектин)

     
     
     Продукт ПЦР - 118 пар нуклеотидов
         

     
     1. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).
     
     2. Продукт ПЦР, полученный на препаратах ДНК из семян нетрансгенной сои.
     
     3. Контроль качества реакционной смеси - ПЦР в отсутствие матричной ДНК.
     
     4-7. Продукты ПЦР, полученные на препаратах ДНК из продуктов переработки сои.
     
     

Приложение 2.2

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам
 идентификации ДНК кукурузы (ген зеин)

     
     
     Продукт ПЦР - 329 пар нуклеотидов
          

     
     1. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).
     
     2-5. Продукт ПЦР, полученный на препаратах ДНК из семян нетрансгенной кукурузы.
     
     6. Контроль качества реакционной смеси - ПЦР в отсутствие матричной ДНК.
     
     

Приложение 2.3

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам идентификации
 ДНК картофеля (ген фосфоенолпируваткарбоксилазы)

     
     
     Продукт ПЦР - 1149 пар нуклеотидов.
     
     

     
     1. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).
     
     2. Продукт ПЦР, полученный на препаратах ДНК из клубней нетрансгенного картофеля.
     
     3. Контроль качества реакционной смеси - ПЦР в отсутствие матричной ДНК.
     
     

Приложение 2.4

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам
идентификации рекомбинантной ДНК (мишень - промотор 35S)

     
     
     Продукт ПЦР - 195 пар нуклеотидов.
     
     

     
     1-3. Продукты ПЦР, полученные на препаратах ДНК из семян сои линии 40-3-2.
     
     4. Продукты ПЦР, полученные на препаратах ДНК из семян нетрансгенной сои.
     
     5. Контроль качества реакционной смеси - ПЦР в отсутствие матричной ДНК.
     
     6. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).
     
     

Приложение 2.5

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам идентификации
 рекомбинантной ДНК (мишень - терминатор NOS)

     
     
     Продукт ПЦР - 180 пар нуклеотидов.
     
     

     
     1-3. Продукты ПЦР, полученные на препаратах ДНК из семян сои линии 40-3-2.
     
     4. Продукты ПЦР, полученные на препаратах ДНК из семян нетрансгенной сои.
     
     5. Контроль качества реакционной смеси - ПЦР в отсутствие матричной ДНК.
     
     6. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).
     
     
     

Приложение 2.6

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам
 идентификации рекомбинантной ДНК (маркерный ген nptII)

     
     
     Продукт ПЦР - 173 пары нуклеотидов
     
     

     
     1. Контроль качества реакционной смеси - ПЦР в отсутствие матричной ДНК.
     
     2. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).
     
     3. Продукт ПЦР, полученный на препаратах ДНК из зерна кукурузы линии MON 863.
     
     

Приложение 2.7

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам
идентификации рекомбинантной ДНК, характерной
для генетической конструкции сои линии 40-3-2

     
     
     Продукт ПЦР - 169 пар нуклеотидов.
     
     

     
     1. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).
     
     2. Продукты ПЦР, полученные на препаратах ДНК из семян нетрансгенной сои.
     
     3-4. Продукты ПЦР, полученные на препаратах ДНК из семян сои линии 40-3-2.
     
     

Приложение 2.8

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам идентификации
рекомбинантной ДНК, характерной для генетической конструкции
сои линии А2704-12

     
     
     Продукт ПЦР - 185 пар нуклеотидов
     
     

     
     1. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).
     
     2. Продукт ПЦР, полученный на препаратах ДНК из семян нетрансгенной сои.
     
     3-6. Продукты ПЦР, полученные на препаратах ДНК из семян сои линии А 2704-12.
     
     

Приложение 2.9

     
     
ПРИМЕР
представления данных электрофореза по результатам идентификации
 рекомбинантной ДНК, характерной для генетической конструкции
сои линии А5547-127

     
     
     Продукт ПЦР - 150 пар нуклеотидов.
     
 

     Продукт ПЦР, полученный на препаратах ДНК из семян сои линии А5547-127.
     
     Продукт ПЦР, полученный на препаратах ДНК из семян нетрансгенной сои.
     
     3. Маркер молекулярной массы (100 п.н., Лаборатория Био-Рад).