МУК 3.3.2.1063-01

     
     
3.3.2. МЕДИЦИНСКИЕ ИММУНОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ПРЕПАРАТЫ

Определение антикомплементарной активности
препаратов иммуноглобулинов для
внутривенного введения

Measurement of anticomplementary activity
of immunoglobulins for intravenous use

Методические указания

     
     
Дата введения 2001-10-01

     
     
     1. В разработке методических указаний принимали участие сотрудники Нижегородского государственного предприятия по производству бактерийных препаратов - фирмы "ИмБио": к.м.н. Т.А.Крайнова, д.б.н. В.В.Анастасиев, Т.В.Короткова, Т.Б.Змачинская, Л.М.Ефремова; Государственного научно-исследовательского института стандартизации и контроля медицинских биологических препаратов им. Л.А.Тарасевича: к.м.н. Л.В.Минакова, к.м.н. Л.К.Лаптева.
     
     2. УТВЕРЖДЕНЫ Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации - Первым заместителем Министра здравоохранения Российской Федерации Г.Г.Онищенко 12 июля 2001 г.
     
     

1. Область применения

     
     Настоящие методические указания предназначены для работников предприятий, осуществляющих контроль качества препаратов иммуноглобулинов для внутривенного введения.
     
     Все положения настоящего документа распространяются на предприятия, производящие МИБП, независимо от их принадлежности и формы собственности.
     
     

2. Общие положения

     
     Согласно требованиям ВОЗ, все серии иммуноглобулинов для внутривенного введения подлежат обязательному испытанию на антикомплементарную активность (АКА). (Материалы ВОЗ, 1992.) При внутривенном введении иммуноглобулинов с высокой антикомплементарной активностью у реципиента могут возникнуть тяжелые анафилактоидные реакции. Уровень АКА и клиническая безопасность являются предметом обсуждения более 10 лет (S. Munkarious, J. Hooper, 1988). Большинство исследователей полагает, что уровень АКА in vitro будет иметь значение для прогноза возможного побочного действия препаратов in vivo. У различных препаратов, производимых в мире, существенно различаются показатели АКА (J. Romer et all, 1982). Наличие значительных отличий в АКА дало основание отдельным авторам считать связь между АКА и безопасностью препарата при внутривенном введении сомнительной. Большинство же исследователей полагает, что данный тест является способом определения повреждения структуры иммуноглобулина и должен быть обязательно контролируемым параметром стабильности производства. Абсолютным критерием допуска к применению препаратов служит их переносимость при внутривенном введении.
     
     Метод определения АКА основан на способности иммуноглобулинов связывать комплемент, препятствуя лизису сенсибилизированных эритроцитов.
     
     Существует множество модификаций метода определения АКА. Методы определения и единицы измерения АКА, используемые различными авторами, трудно сравнимы.
     
     Настоящие методические указания составлены с учетом требований Европейской фармакопеи 1997 г. Нами разработана модификация этого метода. Предлагаемый метод определения антикомплементарной активности иммуноглобулинов обладает достаточно высокой чувствительностью, хорошей воспроизводимостью и простотой выполнения. Важным преимуществом метода является выражение результатов определения в единицах комплемента, связавшегося с 1 мг белка иммуноглобулина. Это позволяет количественно оценивать как низкую, так и высокую антикомплементарную активность. Положительной чертой метода является также расширенный контроль реагентов, используемых для постановки реакции как комплемента, так и гемолитической сыворотки, что улучшает воспроизводимость результатов реакции. Настоящие рекомендации предназначены для определения антикомплементарной активности в препаратах иммуноглобулина для внутривенного введения на этапах его изготовления и хранения и вводятся взамен методических рекомендаций "Определение антикомплементарной активности препаратов иммуноглобулинов" (Нижний Новгород, 1988).
     
     

3. Описание метода определения антикомплементарной активности

     
     Для измерения антикомплементарной активности иммуноглобулина фиксированное количество тестируемого материала (0,2 мл 5%-ного раствора препарата, т.е. 10 мг иммуноглобулина) инкубируют с определенным количеством комплемента морской свинки (20 гемолитических единиц СН50), и затем определяют количество несвязавшегося комплемента; антикомплементарную активность выражают как расход СН50 на 1 мг иммуноглобулина. Допустимый предел связывания комплемента - не более 1 гемолитической единицы СН50 на 1 мг иммуноглобулина для внутривенного введения.
     
     

3.1. Приготовление реактивов

3.1.1. Приготовление цитратного раствора

     
     20,5 г глюкозы, 8,0 г натрия лимонно-кислого трехзамещенного и 4,2 г натрия хлорида растворяют в 750 мл дистиллированной воды. рН раствора доводят до 6,1 10%-ным раствором лимонной кислоты, объем - до 1000 мл дистиллированной водой. Стерилизуют текучим паром в течение 30 мин при температуре 100 °С. Хранят при температуре 4 °С в течение месяца.
     

3.1.2. Приготовление базового раствора кальция и магния

     
     2,2 г хлорида кальция двухводного и 10,17 г хлорида магния шестиводного растворяют в дистиллированной воде и доводят объем раствора до 100 мл. Хранят при температуре 4 °С не более 1 месяца.
     

3.1.3. Приготовление базового раствора барбиталового буфера

     
     В мерную колбу емкостью 2000 мл вносят 85 г хлорида натрия и 3,75 г барбитала натрия (мединала), добавляют 5,75 г барбитала (веронала), предварительно растворенного при нагревании в 200-300 мл дистиллированной воды, и устанавливают рН 7,3, используя 1 н соляную кислоту. Объем раствора доводят до 2000 мл дистиллированной водой. Стерилизуют текучим паром при 100 °С в течение 30 мин. Хранят при температуре 4 °С не более 1 месяца.
     

3.1.4. Приготовление рабочего
желатин-барбиталового буферного раствора (ЖББР)

     
     1 г желатина растворяют в 400 мл дистиллированной воды при нагревании на водяной бане при температуре 70-100 °С. Полученный раствор охлаждают и вносят в мерную колбу на 1000 мл, добавляют 1 мл базового раствора кальция и магния и 200 мл базового раствора барбиталового буфера. Объем раствора доводят до 1000 мл дистиллированной водой. Используют свежеприготовленным.
     

3.1.5. Приготовление эритроцитов барана

     
     Берут один объем крови барана и один объем цитратного раствора, перемешивают. Хранят при температуре 4 °С. Кровь можно использовать в течение 28 дней, но не ранее чем через 7 дней после взятия.
     
     

3.2. Постановка реакции определения антикомплементарной
активности иммуноглобулинов

     
3.2.1. Приготовление 5%-ной суспензии эритроцитов барана

     
     Объем крови, необходимый для работы, отбирают стерильно и промывают физиологическим раствором. Промывку осуществляют с помощью центрифугирования суспензии в течение 10 мин при 200 (1,5-2 тыс. об./мин). Осадок эритроцитов промывают не менее 3 раз 10-кратным (к объему эритроцитов) количеством желатин-барбиталового буферного раствора (ЖББР) до получения бесцветной промывной жидкости. 5%-ную суспензию эритроцитов готовят в том же самом буферном растворе. Плотность клеточной суспензии определяют следующим образом. К 0,2 мл суспензии эритроцитов добавляют 2,8 мл воды и центрифугируют гемолизированный раствор при 400 (3-4 тысячи об./мин). Измеряют оптическую плотность раствора в кювете с толщиной слоя 10 мм, против воды. Плотность клеточной суспензии считают приемлемой, если оптическая плотность надосадочной жидкости при длине волны 541 нм составляет 0,62±0,01. Корректируют плотность суспензии до этого показателя добавлением желатин-барбиталового буферного раствора в соответствии с формулой:
     

,

     
где  - конечный объем суспензии;
     
      - начальный объем суспензии;
     
      - оптическая плотность исходной суспензии при длине волны 541 нм.
     
     Если оптическая плотность ниже 0,61, то добавляют необходимое количество отмытых эритроцитов.
     
     В случае проведения анализа с использованием фотоэлектроколориметра берут 0,5 мл суспензии эритроцитов и 7,0 мл воды. Измерение проводят в кювете с толщиной оптического слоя 10 мм, при длине волны 540 нм. Плотность клеточной суспензии считают приемлемой в случае, если величина поглощения находится в пределах 0,59±0,1. При других показаниях корректируют плотность суспензии, как описано выше.
     

3.2.2. Титрование гемолитической сыворотки

     
     Антисыворотку к эритроцитам барана (гемолизин) предварительно разводят ЖББР 1:10 (0,5 мл гемолизина +4,5 мл ЖББР). Готовят разведения гемолизина 1:100, 1:200, 1:300, 1:400, 1:600, 1:800, 1:1600, 1:3200 с использованием ЖББР. Постановку эксперимента осуществляют в соответствии с табл.1. Пробы гемолизина берут в двух повторностях. В качестве контроля самопроизвольного гемолиза используют пробы, не содержащие гемолизина, в двух повторностях. Для установления 100%-ного гемолиза используют контрольные пробы, в которые вносят дистиллированную воду вместо ЖББР (также в двух повторностях).
     
     

Таблица 1

     
     
     Во все пробы вносят по 0,5 мл 5%-ной суспензии эритроцитов и инкубируют 15 мин при 37 °С. После инкубации в пробы вносят ЖББР и предварительно приготовленный раствор комплемента. Концентрацию раствора комплемента подбирают следующим образом (см. п.3.2.4). Для начала рекомендуется провести титрование с использованием разбавленного в 100 раз комплемента (ампула сухого комплемента растворяется в 1 мл 0,9%-ного раствора хлорида натрия и разводится ЖББР 1:100). Пробы инкубируют при 37 °С 60 мин. Затем пробы охлаждают 10 мин при 4 °С и центрифугируют при 200  (1,5-2,0 тыс.об./мин) в течение 10 мин. Измеряют оптическую плотность надосадочной жидкости при длине волны 541 нм и рассчитывают степень гемолиза в каждой пробирке по формуле:
     

,

     
где  - оптическая плотность проб с разведениями гемолизина;
     
      - оптическая плотность проб с полным гемолизом;
     
      - оптическая плотность проб, не содержащих гемолизина.
    

Рис.1. Титрование гемолитической сыворотки

     Строят график, откладывая по оси ординат значения оптической плотности, а по оси абцисс - соответствующие значения разведения гемолитической сыворотки. График должен иметь вид наклонной кривой, выходящей на плато (рис.1, 2).
     
     

Рис.2. Примеры титрования гемолитической сыворотки

     Титрование гемолизина считается удовлетворительным, если максимальная степень гемолиза находится в пределах 0,5-0,7. Титрование повторяют с использованием более разведенного комплемента в случае, если гемолиз во всех пробах не ниже 0,6; или менее разбавленного комплемента, если максимальный гемолиз не выше 0,5. Если график имеет вид наклонной кривой, не выходящей на плато в области минимальных разведений гемолитической сыворотки, следует повторить титрование с использованием меньших разведений сыворотки (1:10-1:90). Если значения степени гемолиза во всех пробах примерно одинаковы, и данная тенденция сохраняется независимо от изменения концентрации комплемента, следует повторить опыт с использованием разведений сыворотки, больших 1:3200. Определяют минимальное разведение, при котором дальнейшее повышение количества гемолизина не вызывает заметного повышения степени гемолиза. Это разведение определяется как одна минимальная гемолитическая единица (1 МГЕ) в 1 мл. Для титрования используют разведение гемолизина, содержащее 2 МГЕ/мл. В табл.2 и на рис.2 приводится пример титрования гемолитической сыворотки. 1 МГЕ в данном примере - при разведении 1:400. При определении антикомплементарной активности препарата используют разведение сыворотки 1:200, т.е. 2 МГЕ/мл. При проведении последующих анализов с использованием образцов гемолитической сыворотки той же серии можно воспользоваться полученными данными, не повторяя каждый раз титрование. Рекомендуется, однако, проверять гемолитическую активность используемой серии сыворотки не реже одного раза в 6 месяцев.
     
     

Таблица 2

     
     
3.2.3. Приготовление суспензии сенсибилизированных эритроцитов барана

     
     Готовят необходимый объем раствора гемолизина, содержащий 2 МГЕ/мл, и равный объем 5%-ной суспензии эритроцитов барана. Добавляют разведенный гемолизин к суспензии эритроцитов. Смесь инкубируют при 37 °С в течение 15 мин, хранят при температуре 4 °С и используют в течение 2 суток.
     

3.2.4. Титрование комплемента

     
     Содержимое ампулы сухого комплемента растворяют в 1 мл 0,9%-ного хлорида натрия. Отбирают 0,1 мл и готовят определенное разведение комплемента, например 1:250, с использованием ЖББР. Проводят титрование комплемента, как показано в табл.3, в двух повторностях. В каждую пробирку добавляют по 1,0 мл суспензии сенсибилизированных эритроцитов, тщательно перемешивают и инкубируют при 37 °С в течение 60 мин. Пробирки охлаждают 10 мин при 4 °С и центрифугируют при 200  (1,5-2 тыс. об./мин) в течение 10 мин. Измеряют оптическую плотность надосадочной жидкости при длине волны 541 нм и определяют степень гемолиза (У), используя формулу:
     

,

     
где  - средняя оптическая плотность проб, по результатам двух повторностей;
     
      - средняя оптическая плотность контрольных проб с полным гемолизом;
     
      - средняя оптическая плотность контрольных проб при отсутствии гемолиза.
     
     Результаты анализа учитывают, если в диапазон титрования входят значения 50%-ного гемолиза (табл.3, рис.3). Реакцию повторяют с использованием меньшего разведения комплемента при максимальном гемолизе, не превышающем 0,5; или большего разведения, если минимальный гемолиз больше 0,5, а также в том случае, если полученный график не пересекает линию со значением ординаты 0. Определяют значения десятичного логарифма соотношения [У/(1-У)] с использованием стандартного вычислительного оборудования, или соответствующих справочников (например В.М.Брадис "Четырехзначные математические таблицы"). Строят график на миллиметровой или логарифмической бумаге, откладывая по оси абцисс объем добавленного комплемента, а по оси ординат - значения логарифма [У/(1-У)]. Определяют объем комплемента, в котором содержится 1 СН50. Рассчитывают количество СН50/мл в исходном растворе комплемента, равное значению разведения комплемента, деленному на значение объема раствора комплемента V, приводящего к 50%-ному гемолизу. В примере, приведенном в табл.3 и на рис.3, 1СН50 находится в объеме 1,9 мл. Таким образом, содержание комплемента в исходном растворе с учетом разведения: 250:1,9=131,5 СН50/мл. Затем путем разведения готовят раствор комплемента, содержащий 100 СН50/мл. В приведенном примере раствор комплемента нужно разбавить в 1,315 раза, т.е. к 1 мл раствора комплемента добавить 0,315 мл ЖББР.
     
     

Таблица 3

Рис.3. Титрование комплемента

3.3. Определение антикомплементарной активности
иммуноглобулина для внутривенного введения

     
     Перед определением АКА проверяют рН тестируемого иммуноглобулина. Доводят, если это необходимо, рН до 6,5-7,5 с использованием 0,1 н раствора едкого натра. Определяют содержание белка в исследуемом образце иммуноглобулина. В пробу вносят 10 мг белка исследуемого иммуноглобулина. Поскольку содержание белка в анализируемых препаратах не всегда составляет 5,0% (50 мг/мл), то необходимо скорректировать объем иммуноглобулина, вносимого в пробу.
     

Объем иммуноглобулина=,

     
где  - концентрация иммуноглобулина в образце, мг/мл.

Объем ЖББР=0,8 мл - Объем иммуноглобулина.

     Например, если концентрация белка 48 мг/мл (4,8%), то в пробу вносят (50·0,2)/48=0,208 мл иммуноглобулина и 0,8-0,208=0,592 мл ЖББР. В пробы добавляют по 0,2 мл раствора комплемента, содержащего 100 СН50/мл. Конечный объем проб 1 мл. Контрольный образец содержит 0,2 мл раствора комплемента и 0,8 мл физиологического раствора. Пробы инкубируют 60 мин при 37 °С или 18 ч при 4 °С. По истечении срока инкубации пробы разбавляют в 50 раз, до конечного разведения 1:250. Для этого к 14,7 мл ЖББР добавляют 0,3 мл пробы и тщательно перемешивают. Проводят титрование остаточной активности комплемента (табл.4). Затем в пробы добавляют по 1 мл суспензии сенсибилизированных эритроцитов и инкубируют 60 мин при 37 °С. Далее пробы охлаждают, центрифугируют и измеряют оптическую плотность, как описано выше. Определяют значение степени гемолиза У и логарифма соотношения [У/(1-У)]. Строят график на миллиметровой или логарифмической бумаге, откладывая по оси абцисс объем внесенного образца, а по оси ординат - значения логарифма [У/(1-У)]. Определяют активность комплемента в опытных и контрольных пробах, как описано выше, т.е. находят объем образца, дающий степень гемолиза 0,5 (точка графика с ординатой 0). Рассчитывают содержание СН50 в исходных пробах с учетом разведения.
     
     

3.4. Учет результатов

     
     Активность комплемента в опытных и контрольных пробах определяют, как описано в п.3.2.4. Рассчитывают количество комплемента, связанного иммуноглобулином пробы, по формуле:
     

,

     
где  - активность комплемента в контрольной пробе, СН50/мл;
     
      - активность комплемента в исследуемой пробе, СН50/мл;
     
     10 - количество иммуноглобулина в пробе, мг.
     
     Результаты теста учитывают, если активность комплемента в контрольной пробе находится в пределах от 80 до 120 СН50/мл. В противном случае проводят повторный анализ. Иногда активность комплемента в опытных пробах больше, чем в контрольной. В таком случае антикомплементарную активность пробы считают равной нулю. Результаты выражают в количестве комплемента, связавшегося с 1 мг исследуемого иммуноглобулина, в СН50/мг.
     

3.4.1. Пример

     
     В табл.4 приведен пример определения АКА двух образцов иммуноглобулина.
     
     Активность комплемента в контрольной пробе, исходя из табл.4 и рис.4, равна:
     

 СН50/мл,

     
где 1 - количество СН50 в точке графика с ординатой 0;
     
     2,5 - объем образца, вызывающий 50%-ный гемолиз;
     
     250 - конечное разведение образца.
     
     Значение находится в пределах от 80 до 120 СН50/мл, что подтверждает правильность проведения анализа.
     
     В опытной пробе N 11 ед. СН50 содержится в объеме 2,1 мл, т.е. активность комплемента (1·250)/2,1=119 СН50. Поскольку активность комплемента в данной пробе не ниже, чем в контроле, считаем антикомплементарную активность образца равной 0 СН50/ мг.
     
     В опытной пробе N 2 1 ед. СН50 находится в объеме 2,8 мл. Активность комплемента равна (1·250)/2,8=89 СН50/мл. Следовательно, 10 мг пробы связали (100-89)=11 СН50. Таким образом, антикомплементарная активность образца 2 равна 1,1 СН50/мг белка.
     
     

Таблица 4

     
     Примечание. Данные, приведенные в табл.4, являются средними величинами, рассчитанными в результате сравнения двух повторностей.
     
     

Рис.4. Определение антикомплементарной активности образцов иммуноглобулина

     
3.4.2. Заключение

     
     Максимально допустимым для препаратов иммуноглобулинов считают связывание 1 СН50 на 1 мг белка.
     
     

ПРИЛОЖЕНИЕ

     
     
Текст документа сверен по:
официальное издание
М.: Федеральный центр
госсанэпиднадзора Минздрава России, 2001